蛋白互作五種常見技術及操作步驟
瀏覽次數(shù):834 發(fā)布日期:2025-12-15
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蛋白 - 蛋白互作是國自然研究中幾乎所有項目均會涉及的核心內容,以下梳理并列舉 5 項相關技術:酵母雙雜交系統(tǒng)(Y2H)、免疫共沉淀(Co-IP)、GST pull-down、免疫熒光(IF)共定位、鄰近連接技術(PLA)(點擊)。
❤️在介紹上述技術前,需明確以下關鍵注意事項:
- 不同技術的功能定位存在差異:部分技術適用于靶蛋白篩選(如酵母雙雜交 Y2H),部分適用于互作驗證(如鄰近連接技術 PLA),還有部分兼具篩選與驗證雙重功能(如免疫共沉淀 Co-IP 聯(lián)用蛋白質譜可實現(xiàn)篩選,聯(lián)用 WB 則可完成驗證)。因此,篩選類技術一般用于預實驗階段的靶點確定,驗證類技術多用于明確具體分子后的功能驗證。
- 上述技術可分為細胞體系與非細胞體系(In tube)兩類:細胞體系技術更貼合生理研究背景,但易受多種干預因素影響;非細胞體系技術更易驗證蛋白間直接互作,但難以完全還原體內真實場景,且對蛋白純化操作要求更高。為確保研究結論的嚴謹性,蛋白 - 蛋白互作驗證需同時結合細胞與非細胞體系開展。
- 上述技術在國自然項目設計中存在 “必備項” 與 “加分項” 之分(觀點僅供參考),無需在方案中全面羅列,應結合研究需求合理選擇。
一、酵母雙雜交系統(tǒng)(Yeast Two-Hybrid System,Y2H)
核心用于目的蛋白結合靶蛋白的篩選(國自然中為可選技術),真核生物轉錄激活因子普遍具備兩個獨立結構域:DNA 結合域(BD)與轉錄激活域(AD)。二者單獨存在時無轉錄激活活性,僅當空間上發(fā)生靠近,方可重組為具有活性的轉錄激活因子,進而啟動下游基因轉錄。
操作步驟如下:
- 構建融合蛋白:將目標蛋白(蛋白 X)與 BD 融合形成 “誘餌”,將待篩蛋白(蛋白 Y)與 AD 融合形成 “獵物”。
- 轉化酵母細胞:將編碼兩種融合蛋白的基因分別導入酵母細胞。
- 互作介導重組:若蛋白 X 與蛋白 Y 在酵母細胞內發(fā)生互作,其融合蛋白可使 BD 與 AD 靠近,重組為活性轉錄激活因子。
- 結果判定:活性轉錄激活因子會驅動報告基因(如 HIS3、lacZ 等)表達,通過檢測報告基因活性即可判斷蛋白間是否存在互作。
二、免疫共沉淀(Co-Immunoprecipitation, Co-IP)
兼具靶蛋白篩選與蛋白 - 蛋白互作驗證功能(國自然必需技術),免疫共沉淀(Co-Immunoprecipitation, Co-IP)以抗體與抗原的特異性結合為核心原理,用于解析蛋白間相互作用。細胞在非變性條件下裂解時,蛋白間的生理性互作狀態(tài)可得以保留,利用靶蛋白特異性抗體進行沉淀時,與之結合的互作蛋白會隨靶蛋白共同被捕獲。
操作步驟如下:
- 細胞處理:收集細胞并進行裂解,裂解液中需添加蛋白酶抑制劑以抑制蛋白降解。
- 上清獲取:細胞裂解后離心去除沉淀的細胞碎片,收集含可溶性蛋白的上清液。
- 免疫結合:加入靶蛋白特異性抗體及蛋白 A/G 偶聯(lián)磁珠(或瓊脂糖珠),于 4°C 孵育以實現(xiàn)抗體與靶蛋白的特異性結合。
- 復合物捕獲:孵育結束后離心收集結合有蛋白復合物的珠子,棄去未結合的游離蛋白。
- 非特異洗脫:用裂解緩沖液多次洗滌珠子,去除非特異性結合的雜蛋白。
- 復合物釋放:加入蛋白樣品緩沖液并煮沸珠子,使結合的蛋白復合物從抗體 - 珠子復合物上釋放。
- 結果分析:通過 SDS-PAGE 電泳分離蛋白復合物,再結合 Western blotting(驗證已知互作蛋白)或質譜分析(篩選未知互作蛋白)進行結果解讀。
三、GST 下拉實驗(GST pull-down)
兼具靶蛋白篩選與蛋白 - 蛋白互作驗證功能(國自然一般必需技術),GST pull-down 以谷胱甘肽 S - 轉移酶(GST)與谷胱甘肽(GSH)的高親和力結合為核心原理,將 GST 融合蛋白固化于谷胱甘肽包被的瓊脂糖珠上作為 “誘餌”,用于捕獲體系中與之發(fā)生相互作用的 “獵物蛋白”,該方法多用于體外蛋白互作的檢測與驗證。
操作步驟如下:
- 構建攜帶 GST 標簽的融合蛋白表達載體,轉染至原核或真核表達系統(tǒng)中進行蛋白表達。
- 收集表達菌株或細胞并完成裂解操作,裂解液中需添加蛋白酶抑制劑以防止目標蛋白降解。
- 將細胞裂解物與固化有 GST 標簽蛋白或 GST 融合蛋白的瓊脂糖珠充分混合,置于 4℃條件下孵育數(shù)小時。
- 離心收集結合蛋白復合物的瓊脂糖珠,棄去未發(fā)生結合的游離蛋白組分。
- 選用適配緩沖液對瓊脂糖珠進行多次洗滌,去除非特異性結合的雜蛋白。
- 向沉淀的瓊脂糖珠中加入蛋白樣品緩沖液并煮沸,洗脫結合的蛋白復合物。
- 通過 SDS-PAGE 電泳對洗脫的蛋白復合物進行分離,結合 Western blot 技術驗證已知互作蛋白,或借助質譜分析篩選未知互作蛋白。
四、免疫熒光共定位(ImmunoFluorescence Colocalization)
通過蛋白亞細胞共定位結果佐證蛋白 - 蛋白互作關系(國自然一般必需技術),免疫熒光共定位技術是解析細胞內蛋白互作的可視化手段,其核心原理為利用兩種不同發(fā)射波長的熒光標簽(如綠色熒光蛋白 GFP、紅色熒光蛋白 DsRed)分別標記兩種目標蛋白,借助熒光顯微鏡觀察二者在細胞內的空間分布是否重疊,進而為蛋白間的相互作用提供直觀證據(jù)。
操作步驟如下:
- 構建目標蛋白與不同熒光蛋白的融合表達載體,轉染至宿主細胞中實現(xiàn)蛋白表達。
- 待細胞培養(yǎng)至適宜密度后,采用固定液對細胞進行固定處理,維持細胞形態(tài)與蛋白定位。
- 依據(jù)實驗需求,選用特異性熒光抗體對靶蛋白進行免疫標記(若為熒光蛋白融合表達則可省略此步)。
- 利用激光共聚焦顯微鏡對細胞進行成像觀察,采集熒光信號圖像。
- 運用圖像分析軟件處理采集到的圖像,計算共定位系數(shù),對兩種蛋白的共定位程度進行定量評估。
五、鄰近連接技術(Proximity Ligation Assay,PLA)
核心用于蛋白 - 蛋白互作驗證(國自然設計中可作為加分項),鄰近連接技術(PLA)是一類兼具檢測與定量功能的蛋白分析技術,可用于驗證蛋白 - 蛋白互作、檢測蛋白表達水平及解析翻譯后修飾(如磷酸化、乙酰化、糖基化等)。其核心原理為采用一對攜帶寡核苷酸標簽的 PLA 探針(偶聯(lián)寡核苷酸的二抗),當兩種探針分別結合靶蛋白后,若靶蛋白存在互作則探針間距會處于臨界近距離,此時探針上的寡核苷酸可在連接酶作用下形成閉環(huán) DNA 模板;通過滾環(huán)擴增(RCA)技術實現(xiàn)信號級聯(lián)放大后,最終以熒光或顯色方式完成可視化檢測。
操作步驟如下:
- 樣本制備:對細胞或組織樣本進行固定及透化處理,確保探針可有效結合靶蛋白。
- 封閉處理:對樣本進行封閉以阻斷非特異性結合位點,降低背景干擾。
- 一抗孵育:加入兩種特異性一抗,分別與兩種靶蛋白的不同表位特異性結合。
- PLA 探針孵育:加入兩種 PLA 探針(帶寡核苷酸標簽的二抗),使其與對應的一抗特異性結合。
- 連接反應:若兩種靶蛋白存在互作,結合的 PLA 探針會充分靠近,此時連接酶可將探針上的寡核苷酸連接,形成環(huán)狀 DNA 模板。
- 滾環(huán)擴增:采用 RCA 技術對環(huán)狀 DNA 模板進行擴增,生成大量串聯(lián)重復的 DNA 產物,實現(xiàn)信號放大。
- 檢測分析:加入熒光標記的探針與擴增產物結合,通過熒光顯微鏡觀察熒光信號,同時完成定性判斷與定量分析。
⭐空間蛋白互作PLA技術服務哪個公司提供?
樂備實(LabEx)提供 PLA 實驗服務,還有免疫熒光原位雜交檢測:
樂備實是國內專注于提供高質量蛋白檢測以及組學分析服務的實驗服務專家,自2018年成立以來,樂備實不斷尋求突破,公司的服務技術平臺已擴展到單細胞測序、空間多組學、流式檢測、超敏電化學發(fā)光、Luminex多因子檢測、抗體芯片、PCR Array、ELISA、Elispot、PLA蛋白互作、多色免疫組化、DSP空間多組學等30多個,建立起了一套涵蓋基因、蛋白、細胞以及組織水平實驗的完整檢測體系。
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