方案摘要:本方案在牛羊副流感病毒(牛副流感病毒3型BPIV3、羊副流感病毒3型CPIV3)中和試驗中使用Pipetty電動移液器,并結合該儀器精準度高、操作穩(wěn)定、適配性強的核心優(yōu)勢,規(guī)范實驗準備、樣品處理、血清稀釋、病毒孵育及細胞接種等關鍵環(huán)節(jié),確保實驗結果的可靠性與重復性,為牛羊副流感病毒感染的血清學檢測提供標準化技術支撐。
方案詳情:
通過待檢血清中的中和抗體與牛羊副流感病毒(BPIV3/CPIV3)特異性結合,抑制病毒對敏感MDBK細胞的感染和致病變作用(CPE)。利用Pipetty電動移液器精準控制血清稀釋比例、病毒液及細胞懸液加樣量,通過觀察細胞病變情況,采用Reed-Muench法計算血清中和抗體效價,從而判定待檢血清中是否存在特異性中和抗體及效價水平,為臨床疫病診斷和免疫效果評估提供依據。
二、
實驗準備
1、儀器設配
除微生物實驗室常規(guī)滅菌及培養(yǎng)設備外,其他設備和材料如下:
① Pipetty 電動移液器MSIC01-03-20、MSIC01-03-250、MSIC01-03-1000及吸頭;
② 臺式離心機;
③ CO
2恒溫培養(yǎng)箱;
③ 生物安全柜;
④ 倒置顯微鏡;
⑤ 細胞計數(shù)儀;
⑥ 冰箱(2℃~8℃、-20℃、-70℃等不同規(guī)格)。
2、試劑和材料
① 96孔細胞培養(yǎng)板;
② 96孔U型板;
③ MDBK細胞;
④ MEM培養(yǎng)基;
⑤ FBS、馬血清;
⑥ 0.5%胰酶消化液;
⑦ 陽性血清、陰性血清、待檢血清(血清經56℃水浴滅活30min);
⑧ 病毒液(50pL含50TCID50~300TCID50的病毒)。
三、實驗步驟
1、將血液樣品以2000r/min離心5min~10min,在生物安全柜內,使用Pipetty電動移液器配合無菌吸頭,精準吸取上層血清至無菌離心管中,避免吸入血細胞,待檢。
2、將MDBK傳代細胞用0.5%胰酶消化液消化后,用細胞培養(yǎng)液分散細胞,通過細胞計數(shù)儀計數(shù)后,將細胞稀釋至1×10
6個/mL~2×10
6個/mL。使用Pipetty電動移液器,設置連續(xù)分液模式,以每孔100μL的量精準分裝至96孔細胞培養(yǎng)板中。將培養(yǎng)板置于37℃、5%CO₂恒溫培養(yǎng)箱中靜置培養(yǎng)24h,形成90%~95%融合單層細胞,備用。
3、在生物安全柜內,取96孔U型板,使用Pipetty電動移液器,使用混勻模式,用MEM培養(yǎng)基將待檢血清在96孔U型板上從1:4開始進行倍比稀釋,連續(xù)稀釋8個稀釋度,最終稀釋至1:512,每孔保留稀釋后的血清50μL。每份血清設置4個重復孔,確保實驗重復性。
4、設立陽性血清對照、陰性血清對照、正常細胞對照和接毒細胞對照,每個對照設置2個重復孔。檢測牛、羊血清時陽性和陰性對照樣品分為:
a)檢測牛血清樣品,使用BPIV3陽性牛血清、陰性牛血清和BPIV3作為對照;
b)檢測羊血清樣品,使用CPIV3陽性山羊或綿羊血清、陰性山羊或綿羊血清和CPIV3作為對照。
5、使用連續(xù)分液功能向96孔U型板中每孔精準加入50μL病毒液,將U型板置于37℃恒溫環(huán)境中孵育1h。
6、孵育結束后,在生物安全柜內,使用Pipetty電動移液器將樣品精準接種至已制備好的MDBK單層細胞的96孔細胞培養(yǎng)板對應孔中,接種過程中避免移液器槍頭觸碰細胞層,防止損傷單層細胞。接種完成后,將培養(yǎng)板放入37℃、5%CO₂恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)72h,期間每日通過倒置顯微鏡觀察細胞生長狀態(tài)。
7、培養(yǎng)72h后,取出培養(yǎng)板,通過倒置顯微鏡觀察并記錄每份血清各稀釋度孔的細胞病變(CPE)情況,判斷標準為:無CPE記為中和陽性,出現(xiàn)CPE記為中和陰性。采用Reed-Muench法計算血清的中和抗體效價,即能抑制50%細胞出現(xiàn)CPE的血清最高稀釋倍數(shù)。
四、結果判定
1、正常細胞對照孔和陽性血清對照孔細胞生長正常,無CPE出現(xiàn);陰性血清對照孔和病毒對照孔細胞出現(xiàn)明顯CPE,方可判定試驗成立,結果有效。若對照孔不符合上述條件,需重新進行實驗。
2、被檢血清中和抗體效價≥1:4,判定為陽性,提示被檢牛羊曾感染或接種過對應副流感病毒,體內產生特異性中和抗體;被檢血清中和抗體效價<1:4,判定為陰性,提示被檢牛羊未產生有效中和抗體(需結合臨床情況排除感染初期等特殊情況)。