北京元森凱德氣管肺遞送裝置流感病毒小鼠肺炎模型
一、實驗?zāi)康?/strong>
利用北京元森凱德（YSKD）研制生產(chǎn)的小動物氣管肺遞送裝置，通過氣溶膠氣管內(nèi)接種方式構(gòu)建流感病毒小鼠肺炎模型[Influenza virus aerosolization was accomplished with YSKD Biotech MicroSprayer ]，并與傳統(tǒng)鼻腔接種法進行對比，明確該裝置在模型構(gòu)建中的優(yōu)勢，建立標(biāo)準(zhǔn)化、高效且能模擬嚴(yán)重肺炎病理特征的實驗方案，為流感病毒致病性研究、抗病毒藥物篩選及疫苗評價提供可靠的動物模型支撐。
二、實驗原理
北京元森凱德（YSKD）氣管肺遞送裝置可將流感病毒溶液霧化為特定粒徑的氣溶膠顆粒，通過精準(zhǔn)靶向小鼠氣管及肺部，實現(xiàn)病毒的高效、均勻遞送。該方式能模擬人類流感病毒自然吸入感染途徑，且相較于鼻腔接種，可使病毒直接作用于肺部靶器官，充分利用肺部豐富的唾液酸受體（如α2,3-連接唾液酸受體），引發(fā)更接近臨床嚴(yán)重肺炎的病理反應(yīng)，包括更高的病毒載量、更顯著的肺部損傷及強烈的炎癥應(yīng)答。
三、實驗材料與儀器
（一）實驗動物
8周齡雌性C57BL/6J小鼠，體重18-22g，飼養(yǎng)于SPF級環(huán)境，自由攝食飲水，適應(yīng)環(huán)境3天后進行實驗。實驗經(jīng)動物倫理委員會批準(zhǔn)。
（二）病毒株
鼠適應(yīng)型流感病毒A/Puerto Rico/8/34（H1N1，PR8株），經(jīng)雞胚培養(yǎng)擴增后，收集含病毒的尿囊液，分裝并于-80℃凍存?zhèn)溆�。使用前�?jīng)MDCK細(xì)胞進行空斑試驗測定病毒滴度（PFU/mL）。
（三）主要試劑及主要實驗儀器
麻醉劑：1%戊巴比妥鈉溶液（現(xiàn)配現(xiàn)用）；
染色劑：臺盼藍（Trypan Blue）、花青染料（Cy7.5）；
基礎(chǔ)培養(yǎng)基：DMEM培養(yǎng)基（含10%胎牛血清、1%雙抗）；
核酸提取試劑：PureLink™ RNA Mini Kit（Thermo Fisher）；
ELISA試劑盒：小鼠IL-6、IL-1β、IL-17A、MPO、ICAM-1檢測試劑盒（Solarbio）；
組織固定液：4%多聚甲醛溶液；其他：PBS緩沖液、0.22μm濾膜、TPCK胰蛋白酶等。
核心裝置：北京元森凱德（YSKD）研制生產(chǎn)的小動物氣管肺遞送裝置（含YSKD Biotech MicroSprayer 霧化針、可視化小動物喉鏡、固定臺組件）；
四、實驗步驟
（一）實驗分組
將C57BL/6J小鼠隨機分為2組，每組根據(jù)病毒劑量再設(shè)亞組（4.6 PFU、83.8 PFU、420 PFU、1790 PFU），每組5只/時間點，另設(shè)PBS對照組：實驗組：氣溶膠氣管內(nèi)接種組（i.t.組），使用北京元森凱德（YSKD）氣管肺遞送裝置接種；對照組：傳統(tǒng)鼻腔接種組（i.n.組），采用移液器滴鼻接種。病毒氣溶膠制備：取出凍存的PR8病毒液，于冰上解凍，用DMEM培養(yǎng)基稀釋至所需濃度（4.6-1790 PFU/50μL）；將稀釋后的病毒液加入北京元森凱德（YSKD）霧化器中，設(shè)置霧化參數(shù)；
（二）接種操作
1. 氣溶膠氣管內(nèi)接種（i.t.組）
小鼠麻醉：腹腔注射1%戊巴比妥鈉溶液（50μL/10g體重），待小鼠角膜反射消失后固定于手術(shù)臺；氣道暴露：將北京元森凱德（YSKD）小動物可視化喉鏡插入小鼠口腔深部，暴露聲帶；精準(zhǔn)接種：將北京元森凱德（YSKD）氣管肺遞送裝置的霧化針插入氣管，快速推送50μL病毒氣溶膠溶液，確保氣溶膠直接進入肺部；術(shù)后護理：接種后將小鼠直立放置，待蘇醒后放回飼養(yǎng)籠，觀察2h確認(rèn)無異常。
2. 傳統(tǒng)鼻腔接種（i.n.組）
小鼠輕度麻醉后，固定頭部呈仰臥位；用移液器吸取50μL病毒液，緩慢滴入小鼠單側(cè)鼻孔，待液體完全吸入后再滴入另一側(cè)，避免嗆咳。
（三）接種效果驗證（可選，染色追蹤）
取部分小鼠，分別采用臺盼藍和Cy7.5進行接種：臺盼藍驗證：i.t.組和i.n.組分別接種50μL臺盼藍溶液，接種后立即處死小鼠，解剖取肺，觀察肺組織染色分布；
Cy7.5熒光驗證：接種后將小鼠置于IVIS成像系統(tǒng)中，設(shè)置激發(fā)波長770nm、發(fā)射波長820nm，進行活體成像；處死小鼠后取肺組織，進行離體成像，分析熒光強度和分布范圍。
（四）樣本采集
分別在接種后1天、3天、5天（dpi）采集樣本：生存與體重監(jiān)測：每日記錄小鼠存活情況，測量體重變化，當(dāng)體重下降超過25%時人道處死；
組織樣本采集：
肺組織：處死小鼠后，迅速分離左肺（用于病理檢測）和右肺（用于病毒載量、轉(zhuǎn)錄組分析）；右肺置于1mL DMEM培養(yǎng)基中，冰上研磨后離心（12000rpm，10min），取上清過0.22μm濾膜，備用；
支氣管肺泡灌洗液（BALF）：向氣管內(nèi)注入800μL PBS，反復(fù)灌洗3次，收集灌洗液，4℃離心（3000g，10min），取上清用于ELISA檢測。
（五）各項指標(biāo)檢測
1. 病毒載量與滴度檢測
病毒載量（Q-PCR）：采用PureLink™ RNA Mini Kit提取肺組織上清總RNA，以100ng核酸為模板，使用NP基因特異性引物（NP-forward：5'-GACCRATCCTGTCACCTCTGAC-3'；NP-reverse：5'-GGGCATTYTGGACAAAKCGTCTACG-3'）進行RT-qPCR檢測；
病毒滴度（空斑試驗）：將肺組織上清進行10倍梯度稀釋，接種于MDCK細(xì)胞單層，培養(yǎng)48h后，計數(shù)空斑數(shù)，計算PFU/mL。
2. 病理組織學(xué)檢測
左肺組織置于4%多聚甲醛中固定24h，常規(guī)脫水、石蠟包埋、切片（5μm）；進行HE染色，光學(xué)顯微鏡下觀察肺泡壁增厚、炎癥細(xì)胞浸潤、血管水腫、出血等病理變化；采用4分制評分標(biāo)準(zhǔn)進行病理評分：0分（無病變）、1分（輕微病變）、2分（中度病變）、3分（重度病變）、4分（極重度病變）。
3. 肺濕/干比測定
取右肺部分組織，用濾紙吸干表面水分，稱取濕重（W）；80℃烘箱中烘干48h，稱取干重（D）；計算濕/干比（W/D），評估肺水腫程度。
4. 炎癥因子檢測
采用ELISA試劑盒檢測BALF中IL-6、IL-1β、IL-17A、MPO、ICAM-1的濃度，嚴(yán)格按照試劑盒說明書操作，酶標(biāo)儀讀取OD值，計算濃度。
5. 轉(zhuǎn)錄組分析（5dpi樣本）
采用TRIzol試劑提取肺組織總RNA，DNase I消化去除DNA；檢測RNA純度（A260/A280=1.8-2.0）和完整性（1.5%瓊脂糖凝膠電泳）；取2μg合格RNA，使用KCTM Stranded mRNA Library Prep Kit構(gòu)建測序文庫，富集200-500bps PCR產(chǎn)物；采用DNBSEQ-T7測序儀進行PE150測序，對測序數(shù)據(jù)進行差異表達基因（DEGs）篩選、GO和KEGG通路富集分析。
五、數(shù)據(jù)記錄與統(tǒng)計分析
記錄各組小鼠生存曲線、體重變化率、病毒載量、病理評分、炎癥因子濃度等數(shù)據(jù)；
采用GraphPad Prism 8.0軟件進行統(tǒng)計分析：生存曲線用log-rank檢驗，多時間點兩組比較用ANOVA，兩組間比較用t檢驗，P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
六、模型評價標(biāo)準(zhǔn)
接種效率：i.t.組肺組織病毒載量和滴度顯著高于i.n.組（P<0.05），Cy7.5熒光強度和分布范圍更廣泛；
病理特征：i.t.組肺組織病理評分、濕/干比顯著高于i.n.組，呈現(xiàn)更嚴(yán)重的肺泡壁增厚、炎癥浸潤和肺水腫；
炎癥應(yīng)答：i.t.組BALF中IL-6、IL-1β、IL-17A、MPO、ICAM-1濃度顯著升高，轉(zhuǎn)錄組分析顯示炎癥通路（NOD樣受體通路、JAK-STAT通路等）顯著富集；
疾病嚴(yán)重程度：i.t.組小鼠體重下降更快、死亡率更高（83.8 PFU和420 PFU劑量下死亡率達100%），更符合嚴(yán)重肺炎模型特征。
七、展望
北京元森凱德（YSKD）研制生產(chǎn)的小動物氣管肺遞送裝置、YSKD Biotech小動物霧化給藥儀等動物吸入霧化裝置憑借精準(zhǔn)靶向優(yōu)勢，已成為呼吸道疾病模型構(gòu)建的核心工具，未來發(fā)展?jié)摿V闊。技術(shù)層面，可融合智能控制系統(tǒng)，實現(xiàn)霧化粒徑、劑量的實時調(diào)節(jié)與精準(zhǔn)反饋，適配不同品系、體重的實驗動物，進一步提升操作標(biāo)準(zhǔn)化。應(yīng)用場景上，除流感病毒模型外，還可拓展至新冠病毒、呼吸道合胞病毒等多種病原體研究，以及慢阻肺、肺纖維化等慢性肺病的藥物遞送實驗。
同時，結(jié)合影像技術(shù)實現(xiàn)給藥過程與肺部沉積的動態(tài)可視化，將為藥代動力學(xué)研究提供更直觀的數(shù)據(jù)支撐。隨著生物醫(yī)藥領(lǐng)域的發(fā)展，該裝置有望成為連接基礎(chǔ)研究與臨床轉(zhuǎn)化的關(guān)鍵平臺，推動抗病毒藥物與疫苗研發(fā)效率的大幅提升。
參考文獻：
部分用戶案例：哈佛大學(xué)，麻省理工學(xué)院，新加坡國立大學(xué)，瑞士蘇黎世聯(lián)邦理工學(xué)院，中國科學(xué)院上海藥物研究所，中國中醫(yī)科學(xué)院中藥研究所，麗珠醫(yī)藥集團股份有限公司，康龍化成（寧波）生物醫(yī)藥有限公司，中日醫(yī)院呼吸病學(xué)研究中心/中日友好臨床醫(yī)學(xué)研究所，北京中醫(yī)藥大學(xué)，中國藥科大學(xué)，沈陽藥科大學(xué)，復(fù)旦大學(xué)，浙江大學(xué)，四川大學(xué)，中南大學(xué)湘雅醫(yī)學(xué)院等
24h技術(shù)服務(wù)和銷售熱線：17810632981 （手機號碼同微信號）
公司官網(wǎng)：www.yskdbt.com
利用北京元森凱德（YSKD）研制生產(chǎn)的小動物氣管肺遞送裝置，通過氣溶膠氣管內(nèi)接種方式構(gòu)建流感病毒小鼠肺炎模型[Influenza virus aerosolization was accomplished with YSKD Biotech MicroSprayer ]，并與傳統(tǒng)鼻腔接種法進行對比，明確該裝置在模型構(gòu)建中的優(yōu)勢，建立標(biāo)準(zhǔn)化、高效且能模擬嚴(yán)重肺炎病理特征的實驗方案，為流感病毒致病性研究、抗病毒藥物篩選及疫苗評價提供可靠的動物模型支撐。
二、實驗原理
北京元森凱德（YSKD）氣管肺遞送裝置可將流感病毒溶液霧化為特定粒徑的氣溶膠顆粒，通過精準(zhǔn)靶向小鼠氣管及肺部，實現(xiàn)病毒的高效、均勻遞送。該方式能模擬人類流感病毒自然吸入感染途徑，且相較于鼻腔接種，可使病毒直接作用于肺部靶器官，充分利用肺部豐富的唾液酸受體（如α2,3-連接唾液酸受體），引發(fā)更接近臨床嚴(yán)重肺炎的病理反應(yīng)，包括更高的病毒載量、更顯著的肺部損傷及強烈的炎癥應(yīng)答。
三、實驗材料與儀器
（一）實驗動物
8周齡雌性C57BL/6J小鼠，體重18-22g，飼養(yǎng)于SPF級環(huán)境，自由攝食飲水，適應(yīng)環(huán)境3天后進行實驗。實驗經(jīng)動物倫理委員會批準(zhǔn)。
（二）病毒株
鼠適應(yīng)型流感病毒A/Puerto Rico/8/34（H1N1，PR8株），經(jīng)雞胚培養(yǎng)擴增后，收集含病毒的尿囊液，分裝并于-80℃凍存?zhèn)溆�。使用前�?jīng)MDCK細(xì)胞進行空斑試驗測定病毒滴度（PFU/mL）。
（三）主要試劑及主要實驗儀器
麻醉劑：1%戊巴比妥鈉溶液（現(xiàn)配現(xiàn)用）；
染色劑：臺盼藍（Trypan Blue）、花青染料（Cy7.5）；
基礎(chǔ)培養(yǎng)基：DMEM培養(yǎng)基（含10%胎牛血清、1%雙抗）；
核酸提取試劑：PureLink™ RNA Mini Kit（Thermo Fisher）；
ELISA試劑盒：小鼠IL-6、IL-1β、IL-17A、MPO、ICAM-1檢測試劑盒（Solarbio）；
組織固定液：4%多聚甲醛溶液；其他：PBS緩沖液、0.22μm濾膜、TPCK胰蛋白酶等。
核心裝置：北京元森凱德（YSKD）研制生產(chǎn)的小動物氣管肺遞送裝置（含YSKD Biotech MicroSprayer 霧化針、可視化小動物喉鏡、固定臺組件）；
四、實驗步驟
（一）實驗分組
將C57BL/6J小鼠隨機分為2組，每組根據(jù)病毒劑量再設(shè)亞組（4.6 PFU、83.8 PFU、420 PFU、1790 PFU），每組5只/時間點，另設(shè)PBS對照組：實驗組：氣溶膠氣管內(nèi)接種組（i.t.組），使用北京元森凱德（YSKD）氣管肺遞送裝置接種；對照組：傳統(tǒng)鼻腔接種組（i.n.組），采用移液器滴鼻接種。病毒氣溶膠制備：取出凍存的PR8病毒液，于冰上解凍，用DMEM培養(yǎng)基稀釋至所需濃度（4.6-1790 PFU/50μL）；將稀釋后的病毒液加入北京元森凱德（YSKD）霧化器中，設(shè)置霧化參數(shù)；
（二）接種操作
1. 氣溶膠氣管內(nèi)接種（i.t.組）
小鼠麻醉：腹腔注射1%戊巴比妥鈉溶液（50μL/10g體重），待小鼠角膜反射消失后固定于手術(shù)臺；氣道暴露：將北京元森凱德（YSKD）小動物可視化喉鏡插入小鼠口腔深部，暴露聲帶；精準(zhǔn)接種：將北京元森凱德（YSKD）氣管肺遞送裝置的霧化針插入氣管，快速推送50μL病毒氣溶膠溶液，確保氣溶膠直接進入肺部；術(shù)后護理：接種后將小鼠直立放置，待蘇醒后放回飼養(yǎng)籠，觀察2h確認(rèn)無異常。
2. 傳統(tǒng)鼻腔接種（i.n.組）
小鼠輕度麻醉后，固定頭部呈仰臥位；用移液器吸取50μL病毒液，緩慢滴入小鼠單側(cè)鼻孔，待液體完全吸入后再滴入另一側(cè)，避免嗆咳。
（三）接種效果驗證（可選，染色追蹤）
取部分小鼠，分別采用臺盼藍和Cy7.5進行接種：臺盼藍驗證：i.t.組和i.n.組分別接種50μL臺盼藍溶液，接種后立即處死小鼠，解剖取肺，觀察肺組織染色分布；
Cy7.5熒光驗證：接種后將小鼠置于IVIS成像系統(tǒng)中，設(shè)置激發(fā)波長770nm、發(fā)射波長820nm，進行活體成像；處死小鼠后取肺組織，進行離體成像，分析熒光強度和分布范圍。
（四）樣本采集
分別在接種后1天、3天、5天（dpi）采集樣本：生存與體重監(jiān)測：每日記錄小鼠存活情況，測量體重變化，當(dāng)體重下降超過25%時人道處死；
組織樣本采集：
肺組織：處死小鼠后，迅速分離左肺（用于病理檢測）和右肺（用于病毒載量、轉(zhuǎn)錄組分析）；右肺置于1mL DMEM培養(yǎng)基中，冰上研磨后離心（12000rpm，10min），取上清過0.22μm濾膜，備用；
支氣管肺泡灌洗液（BALF）：向氣管內(nèi)注入800μL PBS，反復(fù)灌洗3次，收集灌洗液，4℃離心（3000g，10min），取上清用于ELISA檢測。
（五）各項指標(biāo)檢測
1. 病毒載量與滴度檢測
病毒載量（Q-PCR）：采用PureLink™ RNA Mini Kit提取肺組織上清總RNA，以100ng核酸為模板，使用NP基因特異性引物（NP-forward：5'-GACCRATCCTGTCACCTCTGAC-3'；NP-reverse：5'-GGGCATTYTGGACAAAKCGTCTACG-3'）進行RT-qPCR檢測；
病毒滴度（空斑試驗）：將肺組織上清進行10倍梯度稀釋，接種于MDCK細(xì)胞單層，培養(yǎng)48h后，計數(shù)空斑數(shù)，計算PFU/mL。
2. 病理組織學(xué)檢測
左肺組織置于4%多聚甲醛中固定24h，常規(guī)脫水、石蠟包埋、切片（5μm）；進行HE染色，光學(xué)顯微鏡下觀察肺泡壁增厚、炎癥細(xì)胞浸潤、血管水腫、出血等病理變化；采用4分制評分標(biāo)準(zhǔn)進行病理評分：0分（無病變）、1分（輕微病變）、2分（中度病變）、3分（重度病變）、4分（極重度病變）。
3. 肺濕/干比測定
取右肺部分組織，用濾紙吸干表面水分，稱取濕重（W）；80℃烘箱中烘干48h，稱取干重（D）；計算濕/干比（W/D），評估肺水腫程度。
4. 炎癥因子檢測
采用ELISA試劑盒檢測BALF中IL-6、IL-1β、IL-17A、MPO、ICAM-1的濃度，嚴(yán)格按照試劑盒說明書操作，酶標(biāo)儀讀取OD值，計算濃度。
5. 轉(zhuǎn)錄組分析（5dpi樣本）
采用TRIzol試劑提取肺組織總RNA，DNase I消化去除DNA；檢測RNA純度（A260/A280=1.8-2.0）和完整性（1.5%瓊脂糖凝膠電泳）；取2μg合格RNA，使用KCTM Stranded mRNA Library Prep Kit構(gòu)建測序文庫，富集200-500bps PCR產(chǎn)物；采用DNBSEQ-T7測序儀進行PE150測序，對測序數(shù)據(jù)進行差異表達基因（DEGs）篩選、GO和KEGG通路富集分析。
五、數(shù)據(jù)記錄與統(tǒng)計分析
記錄各組小鼠生存曲線、體重變化率、病毒載量、病理評分、炎癥因子濃度等數(shù)據(jù)；
采用GraphPad Prism 8.0軟件進行統(tǒng)計分析：生存曲線用log-rank檢驗，多時間點兩組比較用ANOVA，兩組間比較用t檢驗，P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
六、模型評價標(biāo)準(zhǔn)
接種效率：i.t.組肺組織病毒載量和滴度顯著高于i.n.組（P<0.05），Cy7.5熒光強度和分布范圍更廣泛；
病理特征：i.t.組肺組織病理評分、濕/干比顯著高于i.n.組，呈現(xiàn)更嚴(yán)重的肺泡壁增厚、炎癥浸潤和肺水腫；
炎癥應(yīng)答：i.t.組BALF中IL-6、IL-1β、IL-17A、MPO、ICAM-1濃度顯著升高，轉(zhuǎn)錄組分析顯示炎癥通路（NOD樣受體通路、JAK-STAT通路等）顯著富集；
疾病嚴(yán)重程度：i.t.組小鼠體重下降更快、死亡率更高（83.8 PFU和420 PFU劑量下死亡率達100%），更符合嚴(yán)重肺炎模型特征。
七、展望
北京元森凱德（YSKD）研制生產(chǎn)的小動物氣管肺遞送裝置、YSKD Biotech小動物霧化給藥儀等動物吸入霧化裝置憑借精準(zhǔn)靶向優(yōu)勢，已成為呼吸道疾病模型構(gòu)建的核心工具，未來發(fā)展?jié)摿V闊。技術(shù)層面，可融合智能控制系統(tǒng)，實現(xiàn)霧化粒徑、劑量的實時調(diào)節(jié)與精準(zhǔn)反饋，適配不同品系、體重的實驗動物，進一步提升操作標(biāo)準(zhǔn)化。應(yīng)用場景上，除流感病毒模型外，還可拓展至新冠病毒、呼吸道合胞病毒等多種病原體研究，以及慢阻肺、肺纖維化等慢性肺病的藥物遞送實驗。
同時，結(jié)合影像技術(shù)實現(xiàn)給藥過程與肺部沉積的動態(tài)可視化，將為藥代動力學(xué)研究提供更直觀的數(shù)據(jù)支撐。隨著生物醫(yī)藥領(lǐng)域的發(fā)展，該裝置有望成為連接基礎(chǔ)研究與臨床轉(zhuǎn)化的關(guān)鍵平臺，推動抗病毒藥物與疫苗研發(fā)效率的大幅提升。
參考文獻：
- Tetrahedral Framework Nucleic Acids Delivery of Pirfenidone for Anti-Inflammatory and Antioxidative Effects to Treat Idiopathic Pulmonary Fibrosis
- Active-Ingredient Screening and Synergistic Action Mechanism of Shegan Mixture for Anti-Asthma Effects Based on Network Pharmacology in a Mouse Model of Asthma
- Biological Hyperthermia-Inducing Nanoparticles for Specific Remodeling of the Extracellular Matrix Microenvironment Enhance Pro-Apoptotic Therapy in Fibrosis
- Inhaled immunoantimicrobials for the treatment of chronic obstructive pulmonary disease
- Environmental factors ultraviolet a and ozone exacerbate the repeated inhalation toxicity of 6PPD in mice via accelerating the aging reaction
- ITGAM macrophage modulation as a potential strategy for treating neutrophilic Asthma: insights from bioinformatics analysis and in vivo experiments
部分用戶案例：哈佛大學(xué)，麻省理工學(xué)院，新加坡國立大學(xué)，瑞士蘇黎世聯(lián)邦理工學(xué)院，中國科學(xué)院上海藥物研究所，中國中醫(yī)科學(xué)院中藥研究所，麗珠醫(yī)藥集團股份有限公司，康龍化成（寧波）生物醫(yī)藥有限公司，中日醫(yī)院呼吸病學(xué)研究中心/中日友好臨床醫(yī)學(xué)研究所，北京中醫(yī)藥大學(xué)，中國藥科大學(xué)，沈陽藥科大學(xué)，復(fù)旦大學(xué)，浙江大學(xué)，四川大學(xué)，中南大學(xué)湘雅醫(yī)學(xué)院等
24h技術(shù)服務(wù)和銷售熱線：17810632981 （手機號碼同微信號）
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小鼠肺炎模型
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