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光片顯微鏡融合組織透明化技術(shù)實現(xiàn)小鼠全器官水平高分辨率成像

瀏覽次數(shù):334 發(fā)布日期:2026-1-15  來源:本站 僅供參考,謝絕轉(zhuǎn)載,否則責任自負

本研究開發(fā)了一種創(chuàng)新的相關(guān)成像方法,成功將宏觀心臟電生理學數(shù)據(jù)與三維微觀心室重建技術(shù)相結(jié)合,旨在揭示纖維化組織在心律失常發(fā)生中的具體作用。通過應用光片顯微鏡和組織透明化技術(shù),研究人員對desmoglein-2突變小鼠模型進行了全器官水平的高分辨率成像,發(fā)現(xiàn)纖維化區(qū)域表現(xiàn)出頻率依賴性的電傳導行為:低頻刺激時傳導正常,而高頻刺激則導致傳導阻滯,從而促進折返性心律失常。這一發(fā)現(xiàn)不僅深化了對致心律失常性心肌病機制的理解,還為個性化心臟電生理模型提供了新思路。

本研究的核心貢獻者包括Francesco Giardini、Leonardo Sacconi、Camilla Olianti、Gerard A. Marchal等作者;研究成果以題為“Correlative imaging integrates electrophysiology with three-dimensional murine heart reconstruction to reveal electrical coupling between cell types”的論文形式,于2025年10月在《Nature Cardiovascular Research》期刊上線發(fā)表。

重要發(fā)現(xiàn)
01實驗設計與多模態(tài)光學成像方法
研究首先通過Langendorff灌流系統(tǒng)分離小鼠心臟,并利用電壓敏感染料(di-4-ANBDQPQ)進行光學映射,以記錄左心室游離壁的動作電位形態(tài)與傳導動力學。實驗設置了低頻(5 Hz)和高頻(10–15 Hz)的心尖起搏協(xié)議,以模擬不同生理狀態(tài)下的電活動。完成功能檢測后,心臟經(jīng)SHIELD組織透明化處理,使其在保持結(jié)構(gòu)完整性的前提下實現(xiàn)光學透明。隨后,采用定制的光片顯微鏡(mesoSPIM)進行全心室三維掃描,成像體素分辨率達3.25 μm × 3.25 μm × 3.1 μm,最終重采樣為各向同性的6 μm³體素,從而實現(xiàn)了從宏觀解剖結(jié)構(gòu)到微觀心肌細胞排列的多尺度重建。這一技術(shù)組合克服了傳統(tǒng)成像中大體積組織高分辨率數(shù)據(jù)的獲取難題,為后續(xù)分析提供了堅實基礎。

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AP動力學和傳導的功能表征

02電生理學特征的定量分析
在對照組(CTRL)和DSG2突變模型小鼠中,光學映射數(shù)據(jù)顯示:DSG2心臟的動作電位峰值時間(TTP)延長,且高頻刺激下復極化時間(APD50、APD70、APD90)無顯著變化,但傳導速度在高頻時明顯下降。尤為重要的是,DSG2心臟在高頻起搏時出現(xiàn)波前變形(以角度分散度衡量),而對照組則保持均勻傳導。通過激活地圖直觀展示了DSG2心臟在高頻刺激下波前沿纖維化區(qū)域扭曲的現(xiàn)象,說明結(jié)構(gòu)異常如何直接導致功能紊亂。這些發(fā)現(xiàn)提示,纖維化并非單純的電惰性屏障,而是動態(tài)調(diào)制傳導的關(guān)鍵因素。

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使用雙光子顯微鏡驗證散射信號

03三維心室重建與纖維化量化
基于光片顯微鏡采集的熒光信號(標記心。┖蜕⑸湫盘枺擞浤z原纖維),研究團隊將心室組織分割為三類:健康心。∕YO)、致密纖維化(CF)和非致密纖維化(NCF)。通過三維形態(tài)計量學分析,發(fā)現(xiàn)DSG2心臟中CF和NCF的體積占比顯著高于對照組,且纖維化主要分布于左心室游離壁的中層心肌區(qū)域。圖中進一步展示了整個心室的三維重建結(jié)果,其中散射信號與膠原分布的高度一致性經(jīng)組織學驗證(如Masson三色染色和雙光子成像),證實了成像數(shù)據(jù)的可靠性。此外,通過分析心肌細胞取向(基于熒光梯度張量計算),研究還重建了全心室的纖維架構(gòu),但未發(fā)現(xiàn)細胞排列紊亂與纖維化空間分布的直接關(guān)聯(lián)。

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所有納入的DSG2心臟的左心室圖譜


04形態(tài)功能關(guān)聯(lián)與心律失常機制
通過將二維光學映射數(shù)據(jù)與三維解剖網(wǎng)格配準,研究人員實現(xiàn)了電活動與纖維化結(jié)構(gòu)的精確疊加。在DSG2心臟中,低頻起搏時纖維化區(qū)域仍可支持傳導,而高頻刺激則在這些區(qū)域邊緣引發(fā)傳導減慢甚至阻滯。進一步通過額外刺激誘導的早搏實驗發(fā)現(xiàn),當刺激間隔短于75 ms時,DSG2心臟更易發(fā)生非持續(xù)性室性心動過速,且折返波圍繞纖維化斑塊傳播。計算模型模擬表明,僅依靠結(jié)構(gòu)數(shù)據(jù)(如纖維化分布和細胞取向)無法完全復現(xiàn)高頻下的傳導異常,必須引入電生理重塑參數(shù)(如連接蛋白Cx43的重新分布、鈉電流減少)才能解釋實驗現(xiàn)象。
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傳導與纖維化分布之間的形態(tài)功能相關(guān)性


05計算模型驗證頻率依賴性濾波效應
研究建立了基于單域方程的心室電活動模型,并逐步整合個性化結(jié)構(gòu)數(shù)據(jù)(如CF/NCF分布、圖像導出的纖維取向)。模擬結(jié)果顯示,單純的結(jié)構(gòu)模型僅能預測低頻傳導,而高頻異常需歸因于纖維化區(qū)域的電生理改變:Cx43在纖維化邊緣呈點狀分布,增強了心肌細胞與非肌細胞(如成纖維細胞)的電耦合,從而形成低通濾波器效應。一維鏈式模型進一步證明,成纖維細胞插入會降低動作電位上升速率(dV/dt)和傳導速度,且該效應隨刺激頻率增加而加劇。這一機制闡明了纖維化如何通過改變局部電路屬性,而非單純阻斷傳導,來促發(fā)心律失常。
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額外電刺激期間纖維化對傳導和心律失常發(fā)生的影響

 

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動作電位傳導的綜合計算建模


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解析整個心臟中的細胞定向

創(chuàng)新與亮點
本研究的核心創(chuàng)新在于突破了傳統(tǒng)成像技術(shù)的局限,實現(xiàn)了全器官水平的功能-結(jié)構(gòu)一體化分析。它解決了以下關(guān)鍵難題:首先,傳統(tǒng)方法難以在保持樣本完整性的同時獲取微米級三維數(shù)據(jù),而光片顯微鏡結(jié)合SHIELD透明化技術(shù)實現(xiàn)了整個小鼠心室的高通量成像,避免了切片帶來的信息損失;其次,通過開發(fā)自動配準算法,將表面光學映射數(shù)據(jù)映射至三維網(wǎng)格,克服了二維數(shù)據(jù)與三維結(jié)構(gòu)對接的挑戰(zhàn)。

在技術(shù)層面,論文提出并優(yōu)化了一套多模態(tài)光學成像流程:從活體電生理記錄到固定樣本的透明化處理,再到光片顯微鏡的全心室掃描,最終通過計算模型進行功能驗證。其中,散射信號作為膠原纖維的代理指標,無需免疫標記即可量化纖維化,這不僅簡化了流程,還提高了重現(xiàn)性。此外,圖像導出的纖維取向映射技術(shù)(空間分辨率96 μm)為模擬提供了更真實的各向異性傳導參數(shù)。

在生物醫(yī)學應用方面,該技術(shù)為心律失常研究提供了新范式。通過揭示纖維化區(qū)域的低通濾波特性,它解釋了為何某些患者在靜息時心電圖正常,而運動或應激狀態(tài)下易發(fā)心律失常。這一發(fā)現(xiàn)有望推動個性化心臟模型的構(gòu)建,在基因治療或藥物篩選中預測干預效果。

總結(jié)與展望
本論文通過整合光學映射、組織透明化和光片顯微鏡技術(shù),首次在全器官尺度上揭示了纖維化心肌的頻率依賴性電傳導機制。研究證實,纖維化區(qū)域通過改變細胞間耦合和離子通道屬性,形成低通濾波器,從而在高頻刺激下促發(fā)心律失常。這一發(fā)現(xiàn)不僅深化了對致心律失常性心肌病的病理理解,還強調(diào)了多模態(tài)成像在心臟電生理研究中的核心價值。展望未來,該技術(shù)框架可進一步與全景光學映射系統(tǒng)結(jié)合,以捕捉雙心室電活動動態(tài);同時,通過引入鈣信號同步記錄或基因編輯模型,有望解析更多分子機制。長遠來看,這類高分辨率功能-結(jié)構(gòu)數(shù)據(jù)將推動數(shù)字心臟模型的發(fā)展,為個性化心律失常風險評估和精準治療策略提供堅實基石。

論文信息
聲明:本文僅用作學術(shù)目的。
Giardini F, Olianti C, Marchal GA, Campos F, Romanelli V, Steyer J, Madl J, Piersanti R, Arecchi G, Perumal Vanaja I, Biasci V, Rog-Zielinska EA, Nesi G, Loew LM, Cerbai E, Chelko SP, Regazzoni F, Loewe A, Bishop MJ, Mongillo M, Kohl P, Zaglia T, Zgierski-Johnston CM, Sacconi L. Correlative imaging integrates electrophysiology with three-dimensional murine heart reconstruction to reveal electrical coupling between cell types. Nat Cardiovasc Res. 2025 Nov;4(11):1466-1486.

DOI:10.1038/s44161-025-00728-9.

發(fā)布者:羅輯技術(shù)(武漢)有限公司
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