ELISA實(shí)驗(yàn)的樣本收集及稀釋處理詳述
瀏覽次數(shù):1513 發(fā)布日期:2024-11-6
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用于ELISA實(shí)驗(yàn)的樣本有多種類型,包括血清和血漿、細(xì)胞培養(yǎng)上清、尿液以及組織勻漿等。不同樣本類型的預(yù)處理方法存在差異。合適的樣本預(yù)處理,是確保ELISA實(shí)驗(yàn)準(zhǔn)確性的第一步。下面介紹幾種不同樣本類型的處理方法:
常規(guī)樣本處理方式:
血液樣本
血液樣本分為全血、血漿、血清三種。簡(jiǎn)單描述:
全血:全血=血漿+血細(xì)胞。
血漿:全血加抗凝劑后離心分離出來(lái)的淡黃色液體是血漿。
血清:全血不加抗凝劑而自然凝固后分離出來(lái)的,不含纖維蛋白原的淡黃色液體是血清。
血液樣本是ELISA/液相實(shí)驗(yàn)最常用的樣本。在收集血液樣本的過(guò)程中應(yīng)避免溶血,因?yàn)榧t細(xì)胞在溶解時(shí)會(huì)釋放具有過(guò)氧化物酶活性的物質(zhì),將會(huì)出現(xiàn)非特異性顯色反應(yīng),導(dǎo)致檢測(cè)結(jié)果不準(zhǔn)確,出現(xiàn)假陽(yáng)性結(jié)果。另外,樣本還需要避免細(xì)菌污染,因?yàn)槠淇赡軙?huì)導(dǎo)致樣本含有內(nèi)源性HRP,也會(huì)導(dǎo)致檢測(cè)結(jié)果不準(zhǔn)確。且要避免使用高血脂樣本。脂質(zhì)會(huì)影響抗原抗體的結(jié)合,從而影響測(cè)值的準(zhǔn)確性。
1.血清和血漿
血清是ELISA實(shí)驗(yàn)最常用的樣本,其預(yù)處理也十分簡(jiǎn)單。
① 使用無(wú)熱原、無(wú)內(nèi)毒素的試管或離心管采集血液樣本,將試管或離心管在室溫下放置1小時(shí)或2-8℃過(guò)夜,分離出血清;
② 2-8℃條件下,以1000×g離心20分鐘,小心收集上層血清。
血漿樣本
① 使用含抗凝劑的采血管或離心管采集血液樣本,采集后30分鐘內(nèi),2-8℃條件下,以1000×g離心15分鐘,小心收集上層血漿;
② 常見的抗凝劑包括:EDTA鈉鹽,肝素鈉,枸櫞酸鈉等。
2.細(xì)胞培養(yǎng)上清
將細(xì)胞培養(yǎng)上清液吸入離心管中,在2-8℃條件下,以1000×g離心20分鐘,除去細(xì)胞碎片和雜質(zhì),收集上清液。
3.細(xì)胞裂解液
① 吸出培養(yǎng)板中的培養(yǎng)基,用胰蛋白酶消化細(xì)胞,再加入適量的培養(yǎng)基,將培養(yǎng)板上的細(xì)胞沖洗干凈(懸浮細(xì)胞可以省略該步驟);
② 將細(xì)胞懸浮液收集到離心管中,在2-8℃條件下,以1000×g離心5分鐘,再吸去培養(yǎng)基,用預(yù)冷PBS洗滌細(xì)胞3次;
③ 加入適量的預(yù)冷PBS(建議在使用前立即加入蛋白酶抑制劑),重懸細(xì)胞。添加比例:約1×106個(gè)細(xì)胞加入150-250μL PBS重懸細(xì)胞;
④ 使樣本在-20℃或-80℃條件和室溫條件下反復(fù)凍融,重復(fù)凍融過(guò)程數(shù)次,直至細(xì)胞完全裂解。也可使用超聲波細(xì)胞破碎器,超聲處理懸浮液來(lái)裂解細(xì)胞;
⑤ 2-8℃條件下,以1500×g離心10分鐘,去除細(xì)胞碎片,收集上清液。
4.組織勻漿
① 用預(yù)冷的PBS(0.01M,PH7.4)沖洗組織,除去表面殘留的血液或雜質(zhì);
② 將組織塊稱重,再切成盡可能小的碎塊,以便充分勻漿;
③ 加入適量的預(yù)冷PBS(一般按1:9的重量體積比,比如1g組織樣品對(duì)應(yīng)9mL PBS,具體體積可根據(jù)實(shí)驗(yàn)需要適當(dāng)調(diào)整,并做好記錄。推薦在PBS中加入蛋白酶抑制劑),用玻璃勻漿器在冰上或冰浴中充分勻漿。為了進(jìn)一步裂解組織細(xì)胞,可以對(duì)勻漿液進(jìn)行超聲破碎,或反復(fù)凍融;
④ 將勻漿液吸入離心管中,2-8℃條件下,以5000×g離心5分鐘,收集上清液。
5.腦脊液
根據(jù)實(shí)驗(yàn)要求,取適量上清液進(jìn)行實(shí)驗(yàn)測(cè)定。
大鼠腦脊液采集方法:采集腦脊液時(shí),用濕紗布擦試大鼠頸背部皮膚,剪去背毛暴露皮膚。兩耳連線剪一橫切口(1.5cm 左右),在其中點(diǎn)向尾側(cè)沿皮下剪開 2cm,將皮分離兩側(cè),擴(kuò)大視野。緊貼大鼠頭 骨依次逐層剪切各肌層,并斷端依次拉向尾側(cè)擴(kuò)大視野。注意,有出血時(shí)用干紗 布按壓止血,保持術(shù)口清晰。接近頸后黃韌帶時(shí),小心地用 7 號(hào)注射針頭分離覆 蓋的肌肉,暴露寰枕膜。用 1ml 注射器(針頭用止血鉗使針尖與針體成 150 度鈍 角),針斜面向上,針尖端近水平刺入蛛網(wǎng)膜下腔,固定針體,緩慢抽取腦脊液, 一般采集量為 100-200 微升。
6.肺泡灌洗液
① 10%水合氯醛溶液,麻醉腹腔。打開腹腔,另取10mL注射器進(jìn)行下腔靜脈采血,盡可能將血放盡。
② 在冰面上對(duì)肺進(jìn)行肺灌洗。取37℃生理鹽水5mL,分三次灌洗:2mL、1.5mL、1.5mL灌洗,回收率在70%以上。
③ 使用無(wú)菌管收集肺泡灌洗液后1000xg離心10min,離心后收集上清,并將標(biāo)本保存于-20℃或-80℃,且應(yīng)避免反復(fù)凍融,如有沉淀形成,應(yīng)再次離心。
樣本保存方法:
樣品收集后,若在1周內(nèi)進(jìn)行檢測(cè),可保存于2-8℃的環(huán)境中;若不能及時(shí)檢測(cè),請(qǐng)按一次使用量分裝,凍存于-20℃(1個(gè)月內(nèi)檢測(cè))或-80℃(3個(gè)月內(nèi)檢測(cè))的環(huán)境中,避免反復(fù)凍融。實(shí)驗(yàn)前,建議再次離心,去除沉淀物。
注意事項(xiàng):
1、試劑盒的檢測(cè)范圍不等同于樣本的濃度范圍。如果樣品中檢測(cè)物濃度高于標(biāo)準(zhǔn)品的最高值,請(qǐng)根據(jù)實(shí)際情況,做適當(dāng)倍數(shù)稀釋(建議查閱文獻(xiàn),并做預(yù)實(shí)驗(yàn))。
2、收集組織與細(xì)胞提取液樣本時(shí),不建議使用商品化的裂解試劑。裂解試劑中的成分,可能會(huì)影響抗原抗體結(jié)合,或造成基質(zhì)干擾,最終影響實(shí)驗(yàn)結(jié)果。
一個(gè)準(zhǔn)確的ELISA檢測(cè)實(shí)驗(yàn),必須包含三大要素:性能可靠的試劑盒、造模成功并準(zhǔn)確采集的樣本、可控環(huán)境且嚴(yán)謹(jǐn)實(shí)驗(yàn)操作,三者缺一不可。在操作過(guò)程中,經(jīng)常遇到樣本稀釋問(wèn)題,需要進(jìn)行樣本稀釋。
一、在ELISA實(shí)驗(yàn)過(guò)程中,超過(guò)試劑盒檢測(cè)范圍的,一般有這幾種情況。
樣本值高的可能情況:
1、樣本中待測(cè)物含量過(guò)高。一些高豐度蛋白來(lái)說(shuō),比如免疫球蛋白、脂聯(lián)素、C肽、載脂蛋白等,在樣本中本身含量就很高,有的達(dá)到mg/mL濃度。
2、一些受誘導(dǎo)表達(dá)的細(xì)胞上清中,大量表達(dá),比如小鼠細(xì)胞誘導(dǎo)后,大量表達(dá)腫瘤壞死因子α(TNFα),小鼠胰島細(xì)胞受誘導(dǎo)后,大量表達(dá)胰島素(INS)。
3、在一些感染性疾病中,大量表達(dá),比如乙肝表面抗原、C反應(yīng)蛋白。
4、疫苗原性研究時(shí),注射疫苗的小鼠,會(huì)產(chǎn)生大量針對(duì)疫苗的抗體。
5、一些被濃縮的樣品,比如重組蛋白的產(chǎn)物,單克隆抗體純品等。
二.如何確定測(cè)定樣本的稀釋倍數(shù)呢?樣本稀釋的原則如下:
在查詢背景知識(shí),或者通過(guò)預(yù)實(shí)驗(yàn),確認(rèn)了樣本濃度過(guò)高,需要進(jìn)行稀釋,就要根據(jù)以下原則,嚴(yán)謹(jǐn)操作和計(jì)算。
1、稀釋倍數(shù)合理。稀釋后樣本測(cè)定的OD值,要求落在標(biāo)準(zhǔn)品最高值OD值的半量程內(nèi),假定標(biāo)準(zhǔn)品最高值的OD值是2.4,那么稀釋后的樣本,OD值接近1.2,在這個(gè)范圍附近,計(jì)算的濃度值最為準(zhǔn)確,以這個(gè)結(jié)果乘以稀釋倍數(shù),得到的樣本濃度最準(zhǔn)確。
2、稀釋過(guò)程規(guī)范。特別是大倍比的稀釋,最好是梯度稀釋。比如樣本要稀釋200倍,就先稀釋10倍,再在10倍稀釋的基礎(chǔ)上,再進(jìn)行稀釋20倍,得到200倍。
3、樣本取樣量不要太小。在樣本充足的情況下,樣本取樣量不要低于5uL,越低的取樣量,在混勻取樣過(guò)程中,誤差越大。
三、在ELISA檢測(cè)過(guò)程中,經(jīng)常會(huì)遇到這樣的問(wèn)題:
樣本測(cè)定OD值超過(guò)標(biāo)曲最高點(diǎn)OD值,造成測(cè)定數(shù)據(jù)無(wú)法直接使用。樣本必須進(jìn)行稀釋,如何確定測(cè)定樣本的稀釋倍數(shù)?咱們先了解下 樣本稀釋容易犯的錯(cuò)誤有哪些?
1、稀釋不足。稀釋倍數(shù)不足時(shí),容易導(dǎo)致最終結(jié)果偏小。
2、過(guò)度稀釋。過(guò)度稀釋時(shí),容易導(dǎo)致最終結(jié)果偏大。
3、稀釋不夠規(guī)范,引入很多人為偏差。稀釋不夠規(guī)范,特別是大比例稀釋時(shí),人為偏差大大增加。