2025年8月7日,美國圣路易斯華盛頓大學(xué)醫(yī)學(xué)院Grant A.Challen 團(tuán)隊(duì)在《Cell Stem Cell》期刊發(fā)表題為“Non-canonical functions of DNMT3A in hematopoietic stem cells regulate telomerase activity and genome intergrity”(DNMT3A調(diào)控造血干細(xì)胞的端粒酶活性和基因組完整性的非經(jīng)典功能)的重要研究文章。
研究通過構(gòu)建DNA甲基化功能喪失但蛋白結(jié)構(gòu)完整的Dnmt3a點(diǎn)突變小鼠模型(E752A、V712G、R832A突變),結(jié)合體內(nèi)外功能實(shí)驗(yàn)、連續(xù)骨髓移植、全基因組重亞硫酸鹽測序(WGBS)及端粒功能分析等研究,系統(tǒng)揭示了DNMT3A在造血干細(xì)胞(HSC)中存在不依賴于其DNA甲基轉(zhuǎn)移酶活性的非經(jīng)典功能,核心結(jié)論為Dnmt3a缺失的HSC通過上調(diào)端粒酶活性、維持端粒長度并抑制DNA損傷應(yīng)答(DDR),實(shí)現(xiàn)無限移植傳代,而保留催化缺失蛋白的HSC則無法長期維持該優(yōu)勢。綜上,這些發(fā)現(xiàn)闡明了DNMT3A在HSCs中具有不依賴于其經(jīng)典甲基化功能的、調(diào)控端粒穩(wěn)態(tài)和基因組完整性的“非經(jīng)典”作用,為理解克隆性造血(CH)和白血病中DNMT3A突變的作用機(jī)制提供了全新視角。

英文標(biāo)題:Non-canonical functions of DNMT3A in hematopoietic stem cells regulate telomerase activity and genome intergrity
中文標(biāo)題:DNMT3A調(diào)控造血干細(xì)胞的端粒酶活性和基因組完整性的非經(jīng)典功能
發(fā)表時間:2025-8-7
發(fā)表期刊:Cell Stem Cell
影響因子:IF20.4/Q1
技術(shù)平臺:WGBS、RNA-seq等
作者單位:美國圣路易斯華盛頓大學(xué)醫(yī)學(xué)院
DOI:10.1016/j.stem.2025.06.010
DNMT3A是造血干細(xì)胞(HSC)命運(yùn)決定的關(guān)鍵調(diào)控因子,也是人類克隆性造血(CH)中最常突變的基因。DNMT3A作為一種DNA甲基轉(zhuǎn)移酶,在先前研究中,DNMT3A功能喪失細(xì)胞僅表現(xiàn)出輕度DNA甲基化變化,且與基因表達(dá)變化不相關(guān)。為探索Dnmt3a在HSC中是否具有DNA甲基化非依賴性功能,研究人員構(gòu)建了多個DNA甲基化功能喪失不同程度的Dnmt3a等位基因突變小鼠模型。分析結(jié)果發(fā)現(xiàn),DNA甲基化功能喪失的Dnmt3a蛋白可以挽救Dnmt3a缺失型HSC的克隆擴(kuò)增,表明Dnmt3a在HSC中具有重要的非經(jīng)典功能。Dnmt3a缺失型HSC能夠無限期移植,表明其能規(guī)避抑制HSC復(fù)制壽命的機(jī)制(如端?s短)。Dnmt3a缺失型HSC顯示出增強(qiáng)的端粒酶活性,并在連續(xù)移植中維持端粒長度,揭示了DNMT3A突變在調(diào)控HSC壽命中與DNA甲基化功能無關(guān)的全新作用。
研究亮點(diǎn)

圖形摘要
研究方法
(1)小鼠模型構(gòu)建:
(2)造血干細(xì)胞功能學(xué)分析:
(3)分子機(jī)制分析
(4)端粒功能分析
(5)DNA損傷與ALT分析:
結(jié)果圖形
(1)Dnmt3a在造血中存在非DNA甲基化依賴性功能的證據(jù)
研究團(tuán)隊(duì)首先通過過表達(dá)實(shí)驗(yàn)揭示Dnmt3a存在區(qū)別于其傳統(tǒng)甲基化酶活性的功能。由于DNMT3L(可增強(qiáng)Dnmt3a甲基化活性的輔助因子)在HSC中不表達(dá),研究團(tuán)隊(duì)在野生型和Dnmt3a敲除(Dnmt3aKO)HSPC中分別異位表達(dá)Dnmt3L,觀察到Dnmt3L僅在野生型背景下抑制移植嵌合率,而在Dnmt3aKO細(xì)胞中無影響(圖1C-E),說明其功能依賴Dnmt3a。更重要的是,過表達(dá)野生型Dnmt3a對野生型和Dnmt3aKO HSPC均產(chǎn)生毒性,導(dǎo)致移植后細(xì)胞快速凋亡(圖1B、F),而Dnmt3L過表達(dá)雖引起更顯著的DNA高甲基化(圖1G-H),卻未產(chǎn)生同等毒性,表明Dnmt3a的某些調(diào)控作用不依賴于其催化活性。WGBS分析顯示,Dnmt3a過表達(dá)僅引起輕度甲基化改變,而Dnmt3L導(dǎo)致數(shù)千個差異甲基化區(qū)域(DMRs)高甲基化,但表型差異卻顯著差異,這表明Dnmt3a功能不能簡單直接等同于其甲基化活性,可能存在獨(dú)立于催化的非經(jīng)典功能。

圖1:Dnmt3a在造血中DNA甲基化非依賴性功能的證據(jù)
(2)DNA甲基化功能喪失的Dnmt3a蛋白可挽救Dnmt3a缺失HSCs的功能變化
為直接驗(yàn)證非經(jīng)典功能,研究者利用慢病毒在Dnmt3aKO HSC中挽救表達(dá)野生型或催化缺失型Dnmt3a點(diǎn)突變體(E752A、V712G、R832A)。分析結(jié)果表明,在Dnmt3aKO HSCs中挽救這些甲基化功能受損的突變蛋白,能夠像挽救野生型Dnmt3a一樣,抑制其增強(qiáng)的CFU形成能力,且所有三種催化缺陷變體同樣能有效挽救CFU異常(圖2A),但并未介導(dǎo)全基因組DNA甲基化顯著增加(圖2B)。這直接證明,挽救Dnmt3aKO HSCs異常增殖表型的功能,不依賴于Dnmt3a的DNA甲基化催化活性。
體內(nèi)移植實(shí)驗(yàn)中,全骨髓細(xì)胞移植顯示Dnmt3aE752A/E752A和Dnmt3aR832A/R832A HSC在二次移植后逐漸衰竭,而Dnmt3aKO HSC持續(xù)擴(kuò)增(圖2C-E),提示甲基化非依賴功能雖能短期調(diào)控HSC活性,但長期維持克隆優(yōu)勢需完全喪失Dnmt3a蛋白。

圖2:DNA甲基化功能喪失的Dnmt3a蛋白挽救Dnmt3a缺失型造血干細(xì)胞的功能改變
(3)DNA甲基化缺失型Dnmt3a可挽救Dnmt3a缺失HSCs在連續(xù)移植中的克隆擴(kuò)增
為在體內(nèi)驗(yàn)證,研究團(tuán)隊(duì)在成年小鼠中誘導(dǎo)表達(dá)純合或雜合的催化失活Dnmt3a突變蛋白(Δ/E752A, Δ/R832A)。在連續(xù)競爭性移植實(shí)驗(yàn)中,完全缺失Dnmt3a(Δ/Δ)的HSCs表現(xiàn)出經(jīng)典且持續(xù)的克隆擴(kuò)增優(yōu)勢,但在表達(dá)催化失活突變體(Δ/E752A, Δ/R832A)的HSCs中,其過度自我更新的表型被顯著抑制,功能上更接近于野生型或雜合缺失(Δ/+)的HSCs(圖3A-C)。這再次證明Dnmt3a調(diào)控HSCs自我更新的關(guān)鍵功能不依賴于其DNA甲基化活性。
值得注意的是,WGBS分析顯示Dnmt3aΔ/E752A與Dnmt3aΔ/Δ細(xì)胞的甲基化譜幾乎完全重疊。此結(jié)果強(qiáng)烈證明,HSC的長期克隆擴(kuò)增優(yōu)勢與DNA甲基化狀態(tài)(催化活性喪失)不相關(guān),而完全依賴于Dnmt3a蛋白的缺失。細(xì)胞周期和凋亡分析排除這些差異源于增殖或存活率變化(圖3D-E),證實(shí)功能差異主要?dú)w因于其內(nèi)在自我更新機(jī)制變化。

圖3:DNA甲基化功能喪失的Dnmt3a挽救連續(xù)移植中Dnmt3a缺失型造血干細(xì)胞的克隆擴(kuò)增
(4)DNA甲基化與基因表達(dá)和功能輸出不相關(guān)
研究者對來自連續(xù)移植后的不同基因型HSCs和骨髓細(xì)胞進(jìn)行了單堿基分辨率的全基因組甲基化測序分析(WGBS)。分析結(jié)果顯示,Dnmt3aΔ/E752A(催化失活)細(xì)胞的整體甲基化譜與Dnmt3a Δ/Δ(完全缺失)細(xì)胞幾乎完全重疊,而與野生型細(xì)胞顯著不同(圖4A-F)。其中主成分分析(PCA)顯示,在Dnmt3aKO細(xì)胞中的差異甲基化區(qū)域(DMRs),Dnmt3aΔ/E752A細(xì)胞也表現(xiàn)出幾乎一致的甲基化水平(圖4C, F)。然而,與幾乎完全一致的甲基化圖譜形成鮮明對比的是,這些基因型在HSC功能(自我更新)和基因表達(dá)譜上存在顯著差異。RNA-seq分析顯示,Δ/E752A和Δ/R832A HSCs的轉(zhuǎn)錄組更接近于野生型,而與Δ/Δ HSCs存在顯著差異(圖4G, H)。
研究通過整合WGBS與RNA-seq數(shù)據(jù),系統(tǒng)論證了DNA甲基化變化不能預(yù)測HSC功能潛力,甲基化非依賴的蛋白-蛋白互作或染色質(zhì)調(diào)控才是驅(qū)動表型的核心機(jī)制,為研究領(lǐng)域長期存在的"甲基化悖論"提供了決定性證據(jù)。

圖4:造血干細(xì)胞的DNA甲基化譜與基因表達(dá)及功能輸出無關(guān)
(5)DNMT3A功能喪失增強(qiáng)TERT表達(dá)和端粒酶活性
研究者觀察到Dnmt3aKO HSCs能夠進(jìn)行無限期連續(xù)移植,提示其可能規(guī)避了限制HSC復(fù)制壽命的機(jī)制,研究團(tuán)隊(duì)聚焦端粒調(diào)控機(jī)制。TRF Southern blot分析和TelC FISH證實(shí),Dnmt3aKO骨髓細(xì)胞和HSPCs的端粒長度顯著長于對照組,且在連續(xù)移植中得以維持(圖5A-C)。qPCR和TRAP實(shí)驗(yàn)揭示,Dnmt3aΔ/Δ細(xì)胞Tert mRNA表達(dá)增加3倍,端粒酶活性顯著升高(圖5D-E)。重要的是,這種端粒酶的上調(diào)也出現(xiàn)在催化失活的Δ/E752A和Δ/R832A HSCs中(圖5G-H),并且這些細(xì)胞的端粒在短期(二次)移植后也出現(xiàn)延長(圖5I),然而在長期移植(四次)后,E752A和R832A組端粒長度不及Dnmt3aΔ/Δ組(圖5J),提示短期端粒酶激活可能依賴甲基化非直接機(jī)制(如轉(zhuǎn)錄調(diào)控),而長期維持需完全蛋白缺失以激活替代性端粒延長(ALT)通路。

圖5:DNMT3A功能喪失會增強(qiáng)TERT表達(dá)和端粒酶活性
(6)Dnmt3a功能喪失可部分挽救端粒酶缺失HSCs的功能
為了探究端粒酶上調(diào)是否是Dnmt3aKO HSCs功能優(yōu)勢的原因,研究者構(gòu)建了Dnmt3a與Terc(端粒酶RNA組分)雙敲除(DTKO)小鼠。在連續(xù)移植中,單純的TercKO HSCs由于端?焖倏s短,其重建功能急劇減弱,但DTKO HSCs的移植能力得到了顯著的部分挽救(圖6A-D)。
有趣的是,盡管DTKO細(xì)胞缺乏端粒酶活性(圖6F),但其端粒在連續(xù)移植后仍被延長(圖6E),并出現(xiàn)了替代性端粒延長(ALT)通路標(biāo)志物C-circle和APBs(圖6I-K)。這表明,在端粒酶缺失的情況下,Dnmt3a缺失能夠激活A(yù)LT通路來維持端粒長度,從而部分補(bǔ)償端粒酶功能。

圖6:Dnmt3a功能喪失部分挽救端粒酶缺失HSCs的功能缺陷
(7)Dnmt3a缺失抑制功能失調(diào)端粒處的DNA損傷應(yīng)答
端粒功能障礙會激活DNA損傷應(yīng)答(DDR),導(dǎo)致細(xì)胞衰老或凋亡。研究發(fā)現(xiàn),在TercKO HSCs中,DDR標(biāo)志物γH2AX水平、端粒功能障礙誘導(dǎo)灶(TIF)以及凋亡均顯著增加。而同時缺失Dnmt3a(DTKO)能顯著抑制這些DDR信號的激活(圖7A-F)。彗星試驗(yàn)也表明DTKO細(xì)胞的整體DNA損傷少于TercKO細(xì)胞(圖7G-H)。
此外,在基因毒性藥物處理下,Dnmt3aKO細(xì)胞也表現(xiàn)出更強(qiáng)的DDR抵抗,而這種抵抗在催化失活突變體(Δ/E752A, Δ/R832A)中減弱或消失(圖7I)。提示Dnmt3a通過非甲基化依賴性方式整合并調(diào)控HSCs對基因毒應(yīng)激(特別是端粒損傷)的DDR信號。

圖7:Dnmt3a喪失抑制功能失調(diào)端粒處的DDR
結(jié)論和啟示
本研究通過一系列功能實(shí)驗(yàn)和分子機(jī)制實(shí)驗(yàn)(WGBS、RNA-seq)等揭示DNMT3A除了具有經(jīng)典的DNA甲基化功能外,在造血干細(xì)胞中還具有至關(guān)重要的“非經(jīng)典”功能:DNMT3A可以作為端粒酶活性和端粒長度的負(fù)調(diào)控因子,并通過抑制DNA損傷反應(yīng)來維護(hù)基因組完整性。DNMT3A功能缺失突變通過解除這些抑制,使HSCs獲得端粒維持和抗DNA損傷的雙重能力,從而驅(qū)動其克隆性擴(kuò)增,這可能是其作為血液腫瘤驅(qū)動突變的核心機(jī)制。
在本研究中,DNA甲基化分析(WGBS)并非為了尋找致病性的甲基化差異,而是通過比較催化失活突變與完全敲除的甲基化圖譜,排除功能差異并非源于甲基化差異,從而將研究焦點(diǎn)轉(zhuǎn)向非甲基化機(jī)制。這是DNA甲基化乃至表觀遺傳學(xué)研究思路中的一個優(yōu)秀案例。
參考文獻(xiàn):
Xavier Raj I, …et al, Challen GA. Non-canonical functions of DNMT3A in hematopoietic stem cells regulate telomerase activity and genome integrity. Cell Stem Cell. 2025 Jul 10. doi: 10.1016/j.stem.2025.06.010.