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熒光法PCR效率檢測的操作流程及細(xì)節(jié)分析

瀏覽次數(shù):831 發(fā)布日期:2025-12-18  來源:本站 僅供參考,謝絕轉(zhuǎn)載,否則責(zé)任自負(fù)
熒光定量PCR(qPCR)實(shí)驗(yàn)中,擴(kuò)增效率直接影響Ct值與起始模板量之間的線性關(guān)系。若效率偏低或偏高,會(huì)導(dǎo)致定量偏差,尤其在相對定量(如ΔΔCt法)分析中影響顯著。因此,在正式實(shí)驗(yàn)前驗(yàn)證引物或探針的擴(kuò)增效率至關(guān)重要。
 
操作流程與關(guān)鍵細(xì)節(jié)
 

1.模板準(zhǔn)備:梯度稀釋
 

使用高質(zhì)量、濃度已知的cDNA或DNA模板。
進(jìn)行連續(xù)梯度稀釋(通常為5倍或10倍稀釋),建議至少5個(gè)稀釋點(diǎn),覆蓋預(yù)期檢測范圍。
 
示例:將cDNA原液稀釋為1:5、1:25、1:125、1:625、1:3125等。
 
2.反應(yīng)體系配制
 

在同一塊96孔板上運(yùn)行所有稀釋樣本及陰性對照(無模板對照NTC)。
推薦使用預(yù)混液(如SYBR Green Master Mix),減少加樣誤差。
保證每孔反應(yīng)體積一致(常見為10–20 μL),充分混勻后短暫離心去除氣泡。

3.儀器程序設(shè)置
 

根據(jù)引物Tm值設(shè)定退火溫度,可采用三步法(變性→退火→延伸)或兩步法(合并退火/延伸)。
確保熒光信號采集步驟正確設(shè)置(如SYBR法選擇FAM通道,淬滅選None)
 
示例循環(huán)參數(shù):
 

預(yù)變性:95°C,10 min
擴(kuò)增循環(huán)(40 cycles):
變性:95°C,15 sec
退火:60°C,30–60 sec(含熒光采集)
延伸:72°C,30 sec(可選)
 
4. 數(shù)據(jù)分析:標(biāo)準(zhǔn)曲線與效率計(jì)算
 
參數(shù) 計(jì)算方式 理想范圍
標(biāo)準(zhǔn)曲線斜率 (Slope) 由軟件自動(dòng)生成 -3.1 到 -3.6
擴(kuò)增效率 (E) E = (10^(-1/slope) - 1) × 100% 90%–105%
相關(guān)系數(shù) (R2) 衡量數(shù)據(jù)點(diǎn)擬合度 >0.99
 
補(bǔ)充說明:擴(kuò)增效率接近100%時(shí),每個(gè)循環(huán)產(chǎn)物翻倍,對應(yīng)斜率為-3.32。偏離此值表明存在抑制物、引物二聚體或非特異性擴(kuò)增等問題。
 
5.結(jié)果判斷與優(yōu)化
 
若效率不在90–105%之間,需排查以下因素:
引物設(shè)計(jì)不合理(GC含量、Tm值差異大、形成二聚體)
模板質(zhì)量差(降解、殘留乙醇或鹽離子)
反應(yīng)條件未優(yōu)化(退火溫度不當(dāng))
可嘗試調(diào)整Mg²⁺濃度、退火溫度或重新設(shè)計(jì)引物。
 
建議
 

每次更換引物、試劑批次或樣本類型前,都應(yīng)重新進(jìn)行擴(kuò)增效率檢測。對于高精度研究(如基因表達(dá)差異微小),必須報(bào)告擴(kuò)增效率以增強(qiáng)結(jié)果可信度。
發(fā)布者:撫州翊立颯生物科技開發(fā)有限公司
聯(lián)系電話:18322999038
E-mail:3169978447@qq.com

標(biāo)簽: 熒光定量PCR qPCR
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