本文來源于微信公眾: 研學(xué)Biotech 作者: GENTOP
在生物技術(shù)和醫(yī)學(xué)研究飛速發(fā)展的今天,科學(xué)家們不斷嘗試將不同功能的生物分子“強(qiáng)強(qiáng)聯(lián)合”,創(chuàng)造出性能更優(yōu)的新型工具。其中,抗體-寡核苷酸偶聯(lián)物(AOC)正逐漸成為一顆耀眼的新星,在疾病治療、高精度成像和超靈敏檢測等領(lǐng)域展現(xiàn)出巨大潛力。
什么是抗體-寡核苷酸偶聯(lián)物?抗體:被譽(yù)為“生物導(dǎo)彈”,能精準(zhǔn)識別并結(jié)合特定抗原,廣泛應(yīng)用于靶向治療和免疫檢測。
寡核苷酸:短鏈的DNA或RNA分子,不僅承載遺傳信息,還能用于基因調(diào)控、信號放大、自組裝納米結(jié)構(gòu)等。
將二者的優(yōu)勢結(jié)合,AOC既能實現(xiàn)抗體的精準(zhǔn)靶向,又能發(fā)揮寡核苷酸的多樣化功能,可謂“一箭雙雕”。
抗體的高親和力(解離常數(shù)處于亞納摩爾范圍)以及寡核苷酸(ON)功能基團(tuán)的多樣性。正是這種功能多樣性使得這些構(gòu)建體能夠觸發(fā)從免疫應(yīng)答到細(xì)胞分化、凋亡及蛋白質(zhì)表達(dá)等復(fù)雜生物學(xué)機(jī)制。
AOC的一個重要特征是偶聯(lián)度(DoC),它代表每個抗體上的ON分子數(shù)量。平均DoC值可通過質(zhì)譜分析或凝膠電泳獲得。DoC值直接決定了AOC的分子量和大小,因此影響諸如溶解性、親和力和聚集性等理化性質(zhì)。此外,ON分子顯著的負(fù)電荷對抗體有重要影響,而抗體在中性pH下帶正電。因此,偶聯(lián)物的整體電荷與DoC值成正比。通常是具有不同DoC的組分復(fù)雜混合物。如圖1所示。

圖1. (a) AOC的簡化示意圖,(b) 平均DoC為1的賴氨酸偶聯(lián)型AOC中不同DoC值組分的典型分布。
AOC的三大核心應(yīng)用領(lǐng)域
圖2.(a−c): 不同免疫PCR方案,d: ELISA 技術(shù)的示意圖; (a)順序法(先加入一抗,再加入蛋白A/G−DNA偶聯(lián)物);(b)模塊化法(先加入一抗,再加入二抗−DNA偶聯(lián)物);(c)直接免疫PCR法(加入AOC)
2. 鄰近連接/延伸檢測
使用一對AOC探針,只有當(dāng)它們結(jié)合到相鄰目標(biāo)時,其連接的DNA片段才能連接或延伸,并被擴(kuò)增檢測,適用于研究蛋白質(zhì)相互作用或翻譯后修飾。
鄰近連接分析(PLA)是通過巧妙結(jié)合兩種現(xiàn)有技術(shù)——酶促DNA連接與PCR擴(kuò)增而實現(xiàn)的。該檢測方法采用一對具有不同蛋白表位親和力的寡核苷酸(用于檢測),或針對不同蛋白的寡核苷酸(用于蛋白質(zhì)-蛋白質(zhì)相互作用研究)。PLA探針的寡核苷酸片段設(shè)計為與后續(xù)添加的連接寡核苷酸互補(bǔ)。當(dāng)探針被置于緊密鄰近位置(即目標(biāo)蛋白彼此靠近或構(gòu)成蛋白質(zhì)復(fù)合體時),通過添加DNA連接酶即可實現(xiàn)兩端連接。連接產(chǎn)物隨后可通過PCR進(jìn)行擴(kuò)增,而未反應(yīng)的探針則保持沉默狀態(tài)。如圖3所示。

圖3. (a) PLA與(b) PEA探針用于蛋白質(zhì)檢測的作用模式
為解決鄰近連接分析在復(fù)雜生物液體中回收率低、效率有限的問題,F(xiàn)redriksson課題組開發(fā)了基于DNA聚合酶的鄰近延伸分析技術(shù)。該技術(shù)最初利用兩個AOC探針在靶標(biāo)介導(dǎo)下使互補(bǔ)DNA片段雜交,再經(jīng)聚合酶延伸形成可qPCR檢測的擴(kuò)增子;后續(xù)改進(jìn)為直接使用單鏈互補(bǔ)寡核苷酸,并引入超嗜熱聚合酶及多靶標(biāo)檢測中的引物消化步驟,近期還與單細(xì)胞RNA擴(kuò)增技術(shù)聯(lián)用。為克服此類酶依賴方法成本高、操作繁瑣的缺點,研究者進(jìn)一步將AOC鄰近結(jié)合與雜交鏈?zhǔn)椒磻?yīng)結(jié)合,發(fā)展出無酶擴(kuò)增版本,該策略也被用于提升細(xì)胞因子分泌細(xì)胞的檢測靈敏度。
3. 電化學(xué)鄰近檢測
利用AOC結(jié)合目標(biāo)后引起電極表面電化學(xué)信號變化,實現(xiàn)無需擴(kuò)增的超靈敏檢測。

圖4a. 蛋白質(zhì)檢測 ECPA 的作用機(jī)制
4. 超分辨率成像
圖4b. DNA-paint用于靶標(biāo)成像的作用機(jī)制
5. 靶向治療與藥物遞送
圖5. AOC在(a)抗體陣列;(b)治療性應(yīng)用;及(c)預(yù)靶向應(yīng)用中的示意圖
如何制備AOC?關(guān)鍵技術(shù)與挑戰(zhàn)
圖6. 基于非共價相互作用對的不同AOC制備方案:(a)共價連接的ON-鏈霉親和素偶聯(lián)物與生物素化抗體;(b)鏈霉親和素與兩個生物素化生物分子的連接;(c)蛋白G/Fc連接;(d)SNAP標(biāo)簽-BG對;(e)鄰近驅(qū)動的紫外激活共價AOC制備
共價方法
圖7. 采用胺-硫醇偶聯(lián)法制備AOC
該抗體通過與含有活化酯基和馬來酰亞胺殘基的交聯(lián)劑反應(yīng),轉(zhuǎn)化為馬來酰亞胺修飾底物(參見圖8中的通用方案)。隨后將兩種反應(yīng)物純化、混合,并通過提高反應(yīng)緩沖液的pH值來啟動它們之間的反應(yīng)。通常采用凝膠過濾法對所得產(chǎn)物進(jìn)行純化。

圖8. 氨基-硫醇偶聯(lián)通用方案
采用可光解的雙功能馬來酰亞胺-NHS交聯(lián)劑,制備可光解DNA條形碼-抗體偶聯(lián)物,用于提高單個活細(xì)胞中蛋白質(zhì)的檢測靈敏度(圖9)。該修飾使得DNA條形碼可通過光解釋放,從而在靶標(biāo)結(jié)合后實現(xiàn)其分離、擴(kuò)增和讀取。

圖9. 通過光解連接子偶聯(lián)的DNA條形碼AOCs及其在蛋白質(zhì)檢測中的應(yīng)用
SATA試劑常用于在蛋白質(zhì)賴氨酸殘基上引入保護(hù)性硫醇基團(tuán)。隨后可使用羥胺輕松脫保護(hù)。該方法適用于單克隆抗體的潛在硫醇化修飾。具體步驟:首先用SATA修飾抗體以引入保護(hù)性硫醇?xì)埢;接著?SMCC 修飾DNA片段,生成含馬來酰亞胺的DNA;最后通過向SATA修飾的抗體中加入羥胺(生成游離硫醇基團(tuán))并加入活化的DNA-馬來酰亞胺片段,啟動偶聯(lián)反應(yīng)。(圖10所示)

圖10. 使用SATA試劑對抗體進(jìn)行硫醇化處理
腙偶聯(lián):抗體首先與琥珀酰亞胺基4-羥基煙酰胺酮丙酮肼(SHyNic)反應(yīng),以在抗體中引入親核性肼基團(tuán)(圖11所示)。

圖11. AOC制備的腙偶聯(lián)技術(shù)
DNA模板引導(dǎo)的蛋白質(zhì)偶聯(lián):利用DNA雜交將反應(yīng)基團(tuán)引導(dǎo)至抗體特定區(qū)域,實現(xiàn)位點選擇性標(biāo)記。
通過三氨基修飾DNA制備含有三個亞硝基三乙酸(NTA)的導(dǎo)向性O(shè)N。隨后,通過用二NHS連接體修飾互補(bǔ)ON,生成反應(yīng)性O(shè)N,形成ON-NHS。如圖12所示。

圖12. DTPC 方案
當(dāng)抗體與導(dǎo)向性O(shè)N孵育時,銅(II)介導(dǎo)的螯合作用會在ON的NTA手柄與抗體金屬結(jié)合口袋中的組氨酸簇之間發(fā)生,從而形成非共價AOC結(jié)構(gòu)(圖13右所示)。隨后加入互補(bǔ)反應(yīng)性O(shè)N,使NHS活化酯與賴氨酸殘基的可用游離氨基緊密接觸,生成相應(yīng)的共價加合物。將水解不穩(wěn)定的活化酯替換為反應(yīng)性O(shè)N上的醛基,以實現(xiàn)抗體近端賴氨酸殘基的還原胺化。該方法被應(yīng)用于開發(fā)一種通用策略,通過高碘酸鹽裂解反應(yīng)性O(shè)N中含有的1,2-二醇連接體,將醛基手柄引入去糖基化抗體(圖13左所示)。

圖13. 利用天然抗體的金屬結(jié)合位點進(jìn)行DNA模板介導(dǎo)的近端賴氨酸偶聯(lián),用于抗體中AOC生成(右)或醛基引入(左)
半胱氨酸殘基偶聯(lián):通過基因工程將額外的保護(hù)性半胱氨酸殘基整合到抗體結(jié)構(gòu)中(硫醇化單抗技術(shù))。這類抗體可用于將單抗與通過 SMCC 或 SPDB 交聯(lián)劑獲得的巰基反應(yīng)性寡核苷酸(ON)連接,但需先進(jìn)行初步去保護(hù)步驟,將保護(hù)性半胱氨酸殘基轉(zhuǎn)化為游離巰基(圖14a所示)。另外通過部分還原抗體鏈間二硫鍵可生成游離巰基(圖14b所示;參見圖15中的方案)。

圖14. 使用(a)工程化單克隆抗體或(b)鏈間二硫鍵還原法制備半胱氨酸連接的AOC

圖15. 部分還原抗體偶聯(lián)方案
點擊化學(xué):如應(yīng)變促進(jìn)的炔-疊氮環(huán)加成,反應(yīng)高效、生物相容性好。
抗體可通過含疊氮基的異功能連接體進(jìn)行修飾,以便與標(biāo)記有張力炔烴的ONs進(jìn)一步反應(yīng)(圖16中的方案)。另一種‘即插即用’的天然抗體功能化方法,采用4-疊氮苯甲酰氟(ABF ,圖17所示)。ABF 試劑在抗體反應(yīng)中表現(xiàn)出顯著快于類似NHS活化酯的動力學(xué)特性,這使得在4℃和25℃條件下均能實現(xiàn)更高的偶聯(lián)效率。因此, ABF 試劑的應(yīng)用對于需要快速高效偶聯(lián)敏感生物分子的場景具有顯著優(yōu)勢。這種“即插即用”的策略進(jìn)一步拓展至使用4-疊氮苯基乙二醛(APG)試劑對抗體進(jìn)行精氨酸選擇性功能化, 由于天然抗體中精氨酸含量低于賴氨酸,精氨酸選擇性偶聯(lián)技術(shù)在制備均一化抗體偶聯(lián)物(AOCs)方面尤為突出。具體而言,與賴氨酸偶聯(lián)(使用活化酯試劑可修飾約40-60個賴氨酸殘基)不同,在相同反應(yīng)條件下使用APG試劑僅需修飾3-8個不同的精氨酸殘基。

圖16. 插入式偶聯(lián)方案

圖17. 使用天然抗體賴氨酸或精氨酸殘基制備的疊氮化物標(biāo)記抗體的 SPAAC 功能化
狄爾斯-阿爾德反應(yīng)(iEDDA):制備含有二硫鍵可裂解連接子和反式環(huán)辛烯(TCO)修飾DNA標(biāo)簽的四嗪修飾抗體(圖18a所示)。經(jīng)細(xì)胞孵育和充分洗滌后,通過還原抗體與DNA組分間的二硫鍵連接子,可對結(jié)合于細(xì)胞表面的AOCs的DNA標(biāo)簽進(jìn)行測序。

圖18a. iEDDA反應(yīng)在AOC生成中的應(yīng)用
非天然氨基酸插入:通過基因密碼子擴(kuò)展技術(shù),在抗體特定位點引入酮基等反應(yīng)基團(tuán),實現(xiàn)高度均一的偶聯(lián)。
例如,含酮基的非天然氨基酸(如乙;-L-苯丙氨酸(pAcF))可通過基因整合方式引入。利用針對pAcF的進(jìn)化型正交tRNA/氨酰tRNA合成酶對,響應(yīng)琥珀 UAG 密碼子在抗體特定位點進(jìn)行修飾。隨后,pAcF的酮基可在溫和反應(yīng)條件下形成穩(wěn)定的肟鍵,選擇性地與氨基氧基衍生配體偶聯(lián),類似于化學(xué)Hydralink方法(圖18b;參見圖19中的方案)。

圖18b. 肟鍵合在AOC生成中的應(yīng)用

圖19 肟鍵合偶聯(lián)方案
當(dāng)前挑戰(zhàn):如何在保持抗體活性的前提下,實現(xiàn)高產(chǎn)率、高均一性、高穩(wěn)定性的偶聯(lián),仍是科研與產(chǎn)業(yè)化的核心課題。
未來展望AOC不僅代表了生物共軛化學(xué)的前沿,更是交叉學(xué)科創(chuàng)新的典范——它融合了免疫學(xué)、核酸化學(xué)、材料科學(xué)與工程學(xué),為我們理解生命過程和戰(zhàn)勝疾病提供了全新的武器。