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非層狀液晶脂質(zhì)納米顆粒與細(xì)胞外囊泡雜交實(shí)現(xiàn)核酸分子高效裝載的研究

瀏覽次數(shù):682 發(fā)布日期:2025-10-11  來源:本站 僅供參考,謝絕轉(zhuǎn)載,否則責(zé)任自負(fù)

近年來,mRNA 疫苗和 siRNA 藥物等 RNA 療法發(fā)展迅猛,取得了顯著的臨床進(jìn)展,如 COVID-19 疫苗、Onpattro 和 Spinraza 等突破性藥物的獲批上市。然而,核酸藥物在體內(nèi)的高效遞送仍是關(guān)鍵挑戰(zhàn)。常用的脂質(zhì)納米顆粒(lipid nanoparticles, LNPs)載體雖然具備易于生產(chǎn)和載藥量高等優(yōu)勢(shì),但仍受限于靶向性不足和免疫原性等問題。

細(xì)胞外囊泡(extracellular vesicles, EVs)作為一種天然存在的細(xì)胞分泌囊泡,具備低免疫原性、良好的生物相容性和潛在的靶向性,被認(rèn)為是理想的藥物遞送載體。有證據(jù)表明:相比于 LNPs,EVs 可以更安全和高效地遞送核酸。然而,如何將治療性核酸藥物有效裝載到 EVs 內(nèi)部仍然是一個(gè)不小的挑戰(zhàn)。通過對(duì)生產(chǎn) EVs 的細(xì)胞系進(jìn)行基因工程改造來裝載蛋白質(zhì)或核酸是一種廣泛應(yīng)用的方法,然而該方法在面對(duì)臨床患者來源的 EVs 時(shí)適用性有限,且難以用于裝載經(jīng)化學(xué)修飾的核酸。另一方面,在 EVs 分離后進(jìn)行載藥的方法,如電穿孔和超聲處理等,則可能對(duì)其結(jié)構(gòu)和功能造成負(fù)面影響。


為了應(yīng)對(duì)這些挑戰(zhàn),瑞士蘇黎世聯(lián)邦理工學(xué)院的研究團(tuán)隊(duì)在 Advanced Science 發(fā)表了題為“Loading of Extracellular Vesicles with Nucleic Acids via Hybridization with Non-Lamellar Liquid Crystalline Lipid Nanoparticles”的研究論文。本研究提出了使用非層狀液晶脂質(zhì)納米顆粒(non-lamellar liquid crystalline lipid nanoparticles, LCNPs)與 EVs 自發(fā)雜交形成雜交細(xì)胞外囊泡(HEVs)的新策略,實(shí)現(xiàn)包括 siRNA、mRNA 和核酸適配體在內(nèi)的多種核酸分子的高效裝載,同時(shí)保持 EVs 的生物學(xué)功能。這一雜交體系的體外裝載效率遠(yuǎn)高于它的“前輩”——LCNPs,有望進(jìn)一步拓展至更廣泛的細(xì)胞來源甚至實(shí)現(xiàn)產(chǎn)業(yè)化。

一、LCNPs 的制備與表征
研究人員采用可電離脂質(zhì) DLin-MC3-DMA(MC3)、輔助脂質(zhì) DOPE 和非離子表面活性劑 HS15 制備了非層狀液晶脂質(zhì)納米顆粒(LCNPs)。通過小角 X 射線散射 (small-angle X-ray scattering, SAXS) 和冷凍透射電鏡分析 LCNPs 的結(jié)構(gòu)特性,發(fā)現(xiàn) LCNPs 在 pH 5 時(shí)呈現(xiàn)反六角相(HII 相),而在 pH 7.4 時(shí)轉(zhuǎn)變?yōu)楦鼰o序的非層狀相(可能是反向膠束 L2 或海綿相 L3),表明 LCNPs 具有 pH 依賴性的結(jié)構(gòu)轉(zhuǎn)變行為(圖 1)。

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圖1. LCNPs 的理化特征

二、HEVs 的形成與表征
研究人員從 3D 培養(yǎng)的間充質(zhì)干細(xì)胞(MSCs)中分離 EVs,并依照 ISEV 指南建議的多種技術(shù)手段表征 EVs 的質(zhì)量。隨后,深入研究了 EVs 與 LCNPs 雜交形成 HEVs 的動(dòng)力學(xué)。靜態(tài)光散射(SLS)和動(dòng)態(tài)光散射(DLS)的結(jié)果顯示,EVs 與 LCNPs 混合后,顆粒濃度呈指數(shù)衰減,并在 30 min 后趨于穩(wěn)定。同時(shí),粒徑在 30 min 內(nèi)從 160 nm 增大至 190 nm 并趨于穩(wěn)定,表明雜交過程迅速進(jìn)行。冷凍透射電鏡(cryo-TEM)直觀地觀察了雜交的過程,如圖 2 所示,混合后 5 分鐘內(nèi),半融合的 HEVs 已然出現(xiàn);4 小時(shí)之后,幾乎全部形成了完全融合的 HEVs,且 EV 膜蛋白依然分布于顆粒表面。此外,研究者還探究了溫度和 pH 對(duì)雜交動(dòng)力學(xué)的影響。結(jié)果表明,在 37℃ 時(shí),雜交過程更為迅速;而在 4℃ 時(shí),動(dòng)力學(xué)顯著減緩。在酸性條件下(pH ≤ 6)EVs 與 LCNPs 之間的相互作用更為強(qiáng)烈,導(dǎo)致粒徑急劇增大,可能促使大聚集體的形成。

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圖2. cryo-TEM 成像觀察 HEVs 的形成

進(jìn)一步地,采用納米流式檢測(cè)技術(shù)(NanoFCM)在單顆粒水平上探究脂質(zhì)納米載體的拓?fù)浣Y(jié)構(gòu)如何影響其與 EV 的相互作用。研究人員選取三種不同類型的脂質(zhì)納米載體(LCNPs、DOPC-NPs 和 DOTMA-NPs),分別裝載了熒光標(biāo)記的小核酸(FAM-siRNA),并與 CellTrace Red 標(biāo)記的 EVs 以 1:1 比例混合。NanoFCM 的結(jié)果顯示,不同類型的 NPs 與 EVs 混合后,均形成了不同比例的雙陽性亞群,證實(shí) HEVs 的形成(圖 3A 中以青綠色方框突出顯示)。進(jìn)一步分析雙陽性顆粒計(jì)數(shù)相對(duì)于 CellTrace 群體的比例,發(fā)現(xiàn)在酸性條件下,與高度正電荷的納米顆粒(如 LCNPs 或 DOTMA-NPs)形成的 HEVs,分別達(dá)到了 57% 和 53% 的最高共定位率。而在 pH 7.4 下,LCNPs 與 EVs 的相互作用效率降至 40%;相比之下,DOPC-NPs 與 EVs 的相互作用效率最低,僅為 12%(圖 3B)。這表明 NPs 的表面電荷、脂質(zhì)組成以及拓?fù)浣Y(jié)構(gòu)對(duì)其與 EVs 的相互作用均有顯著影響。此外,研究人員通過不同類型的核酸載物(mRNA 和核酸適配體)來評(píng)估 HEVs 的形成,進(jìn)一步驗(yàn)證 HEVs 平臺(tái)裝載多種類型的核酸分子的有效性和普適性。

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圖3. NanoFCM 分析不同條件下 HEVs 的形成

三、HEVs 的生物學(xué)特性
為了探究 EVs 膜蛋白是否存在于 HEVs 表面以及 LCNPs 是否傾向于與特定的 EVs 亞群相互作用,研究人員利用光流體平臺(tái)的免疫親和捕獲和熒光顯微技術(shù)進(jìn)行評(píng)估。


研究人員選擇了多種 EV 和 MSC 特征膜蛋白的抗體作為捕獲探針,結(jié)果顯示,EVs 和 HEVs 的膜蛋白表達(dá)譜沒有顯著差異,且呈現(xiàn) CD26 >> CD73 > CD9 > CD63 > IgG 的相對(duì)趨勢(shì)(圖 4C)。此外,不同膜蛋白與核酸的共定位比例均在 30%~40% 之間,這個(gè)結(jié)果與 NanoFCM 的結(jié)果互相印證(圖 4D)。這表明 LCNPs 與 EVs 的雜交過程是非特異性的,不偏好任何特定的 EV 亞群。

進(jìn)一步地,對(duì)膜蛋白的生物活性及核酸載物的完整性進(jìn)行了驗(yàn)證。酶活性實(shí)驗(yàn)沒有發(fā)現(xiàn) HEVs 的 CD73 和 CD26 酶活性與天然 EVs 有顯著差異(圖 4E, F)。此外,HEVs 的結(jié)構(gòu)能夠保護(hù)核酸載物免受降解。

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圖4. HEVs 生物學(xué)特性的綜合表征

四、HEVs 的基因遞送功能
研究人員以 HeLa 細(xì)胞作為模型,構(gòu)建了穩(wěn)定表達(dá)綠色熒光蛋白(GFP)或熒光素酶(FLuc)的細(xì)胞株,進(jìn)一步通過轉(zhuǎn)染 siRNA 或 mRNA 的質(zhì)粒以評(píng)估 HEVs 和 LCNPs 的基因沉默和基因表達(dá)效率。

1)在基因沉默實(shí)驗(yàn)中,裝載 siGFP 的 HEVs 于低血清條件下可使 GFP 熒光強(qiáng)度降低約 75%,其沉默效率與商業(yè)轉(zhuǎn)染試劑相當(dāng)(圖 5A);即使在高血清條件下,經(jīng)過 4 小時(shí)處理,裝載 siGFP 的 HEVs 仍能顯著降低 GFP 熒光強(qiáng)度約 15%(圖 5B)。
2)在基因表達(dá)實(shí)驗(yàn)中,低血清條件下,裝載 mRNA 的 HEVs 即使在較低 mRNA 劑量下仍可誘導(dǎo)較高的熒光素酶表達(dá)水平(圖 5C);而在高血清條件下,即便在較高的 mRNA 劑量下,該載體系統(tǒng)仍能實(shí)現(xiàn)顯著增強(qiáng)的熒光素酶表達(dá)(圖 5D)。

上述結(jié)果表明,HEVs 的體外基因沉默和基因表達(dá)效率均優(yōu)于傳統(tǒng)的 LCNPs。

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圖5. HEVs 在體外的基因沉默和基因表達(dá)效率

結(jié)論
本研究開發(fā)了一種新型非層狀液晶脂質(zhì)納米顆粒與 EVs 的雜交策略,獲得的雜交 EVs 成功實(shí)現(xiàn)了核酸的高效裝載。這一策略在避免了傳統(tǒng)方法對(duì) EVs 結(jié)構(gòu)影響的前提下,顯著提高了核酸的裝載效率,同時(shí)保留了 EVs 的生物活性。這一多功能平臺(tái)展現(xiàn)了將各種治療性藥物裝載到 EVs 中的巨大潛力,為開發(fā)基于 EV 的基因遞送系統(tǒng)開辟了新的路徑。


展 望
NanoFCM 憑借卓越的散射和熒光靈敏度,在單顆粒水平解析了 HEVs 的粒徑分布、濃度、融合效率和膜蛋白表達(dá)等多維信息。這使得研究者能夠精確監(jiān)測(cè) EVs 與 LCNPs 的雜交過程,并高效評(píng)估了多種非編碼 RNA 分子(即 mRNA、siRNA 和核酸適配體)載入 EVs 的效率。NanoFCM 的單顆粒多參數(shù)表征能力為深入探究生物雜交載體平臺(tái)提供了有力支持,進(jìn)而推動(dòng)基于 EVs 的基因遞送系統(tǒng)的發(fā)展。

發(fā)布者:廈門福流生物科技有限公司
聯(lián)系電話:4006677046
E-mail:marketing@nanofcm.cn

標(biāo)簽: 納米流式 外泌體 mRNA
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