細(xì)胞消化原理以及難消化細(xì)胞解決方案
瀏覽次數(shù):1055 發(fā)布日期:2025-9-15
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當(dāng)細(xì)胞達(dá)到匯合80-90%時,必須對其進(jìn)行傳代培養(yǎng)或傳代。未能傳代培養(yǎng)匯合細(xì)胞會導(dǎo)致有絲分裂指數(shù)降低并最終導(dǎo)致細(xì)胞死亡。傳代培養(yǎng)的第一步是通過胰蛋白酶消化或機(jī)械手段將細(xì)胞從原代培養(yǎng)容器表面分離。小伙伴們在給貼壁細(xì)胞傳代的時候有沒有遇到細(xì)胞消化不下來的情況呢?有時候等了10分鐘甚至20分鐘細(xì)胞仍不動,繼續(xù)等待怕消化過度,暴力吹下又怕對細(xì)胞造成機(jī)械損傷,可謂進(jìn)退兩難。我們先來了解下消化的作用機(jī)制:
一、消化作用的分子基礎(chǔ)
1.胰酶的核心作用機(jī)制
胰蛋白酶作為絲氨酸蛋白酶,特異性切割精氨酸和賴氨酸的羧基端肽鍵,通過水解作用破壞以下關(guān)鍵結(jié)構(gòu):
細(xì)胞外基質(zhì)(ECM):降解纖連蛋白、層粘連蛋白等貼附支架蛋白;
細(xì)胞間連接蛋白:切割鈣黏蛋白和整合素,解除細(xì)胞-基質(zhì)及細(xì)胞-細(xì)胞間的黏附。
輔助試劑EDTA通過螯合Ca²⁺/Mg²⁺離子,削弱整合素與ECM的結(jié)合,提升胰酶效率。
2.離子螯合劑的協(xié)同效應(yīng)
0.02% EDTA通過剝奪細(xì)胞表面依賴鈣/鎂離子的黏附蛋白(如橋粒、鈣黏著蛋白),使細(xì)胞連接失活而不損傷膜蛋白結(jié)構(gòu),適用于表面分子檢測實驗。
二、消化過程的分階段動態(tài)變化
1.初始裂解階段
胰酶滲透細(xì)胞層,切割ECM蛋白,細(xì)胞邊緣開始卷曲,貼附力下降;
2.連接破壞階段
鈣黏蛋白降解導(dǎo)致細(xì)胞間連接松開,單層細(xì)胞分裂為小片狀;
3.完全脫落階段
細(xì)胞形態(tài)由鋪展轉(zhuǎn)為圓形,最終脫離培養(yǎng)表面(需37℃恒溫加速反應(yīng))。
三、終止反應(yīng)的生化原理
血清終止法:含血清培養(yǎng)基中的α-1抗胰蛋白酶可不可逆抑制胰酶活性;
清洗終止法:PBS沖洗去除殘留胰酶,避免過度消化損傷細(xì)胞膜受體。
以下總結(jié)了細(xì)胞難消化的原因,以及對應(yīng)的處理方式:
1.細(xì)胞貼壁緊
不同種類的細(xì)胞貼壁的松緊程度是不一樣的,比如293系列細(xì)胞貼壁很松,是晃一晃就可能掉下來的程度。而MCF10A、IBMDM等巨噬細(xì)胞系貼壁很緊,可能需要消化5-10min甚至更久才能脫落。在培養(yǎng)一株細(xì)胞之前,可以問問有經(jīng)驗的科研人員或者上網(wǎng)查資料或者從細(xì)胞來源處確認(rèn)這株細(xì)胞大概消化多久,才能更好完成消化步驟使細(xì)胞保持最佳狀態(tài)。
還有不規(guī)則形態(tài)細(xì)胞存在更多貼附位點(diǎn),需增加胰酶用量至完全覆蓋細(xì)胞層才能達(dá)到消化的目的。如:
| 細(xì)胞類型 |
主要粘附蛋白 |
消化難度 |
| 293T |
纖連蛋白 |
★☆☆☆☆ |
| MCF-7 |
層粘連蛋白+膠原 |
★★★☆☆ |
| 原代肝細(xì)胞 |
整合素+E-鈣粘蛋白 |
★★★★★ |
解決方案:若您培養(yǎng)的細(xì)胞貼壁較緊,參考以下步驟1.增加消化時間,常規(guī)細(xì)胞消化時間為1-3min,難消化的細(xì)胞需要5-15min甚至更長。 2.提高胰酶的濃度,常用濃度為0.25%,可提高到0.5%;3.加入足量的胰酶至沒過細(xì)胞,37℃消化;使用含有EDTA的胰酶,具體請以鏡下觀察到細(xì)胞變圓脫落為準(zhǔn)。(常用的培養(yǎng)器皿推薦胰酶添加量)
| 培養(yǎng)瓶類型 |
胰酶濃度/添加量 |
| 6孔板(每孔) |
500ul (0.25%含EDTA胰酶) |
| T25瓶 |
1ml (0.25%含EDTA胰酶) |
| T75瓶 |
2.5 ml (0.25%含EDTA胰酶) |
| 10cm皿 |
2 ml (0.25%含EDTA胰酶) |
小技巧:在消化貼壁較緊的細(xì)胞有個小技巧,就是消化到細(xì)胞要脫落的時候先不終止,先吸胰酶輕輕吹下細(xì)胞,大部分細(xì)胞脫落后再加終止液。貼壁太強(qiáng)的細(xì)胞,先加終止有時候會很快貼壁回去導(dǎo)致消化其實細(xì)胞已經(jīng)要脫落了,但一加終止液就貼回去的情況。
注:如還有部分細(xì)胞未消化下來,可采用分步消化:
① 準(zhǔn)備一個無菌的 15ml 離心管,加入 2ml含 10%FBS 的完全培養(yǎng)基;
② 將消化下來的細(xì)胞吸入①中的離心管內(nèi)中和(避免吹打);
③ 向之前消化的培養(yǎng)瓶中加入 1ml 胰酶繼續(xù)消化 2min 左右,輕拍培養(yǎng)瓶,95%左右細(xì)胞脫落后加入 2ml含 10%FBS 的完全培養(yǎng)基中和,中和后的細(xì)胞懸液移入①中的離心管內(nèi)。
比如:bEnd.3細(xì)胞培養(yǎng)時間越長越難消化,培養(yǎng)4d傳代,一般消化3~5 min;培養(yǎng)7d傳代,一般消化5~10 min。具體消化時間以顯微鏡下觀察細(xì)胞狀態(tài)為準(zhǔn)。
2.有殘留血清
血清中的某些蛋白質(zhì)(如α1-抗胰蛋白酶,α2-巨球蛋白)對蛋白酶有強(qiáng)烈的抑制作用。如果PBS清洗不徹底,胰酶將不能發(fā)揮作用。
解決方案:若在消化途中發(fā)現(xiàn)因清洗不徹底而無法消化下來,吸去培養(yǎng)器皿中的胰酶(如果已有部分細(xì)胞脫落,將已脫落細(xì)胞轉(zhuǎn)移至離心管),向培養(yǎng)器皿中加入足量PBS重新潤洗30s,棄去PBS再加入新的胰酶來重新消化。
3.胰酶量過少/濃度低/消化溫度低
有的小伙伴習(xí)慣用胰酶清洗細(xì)胞后去掉大部分胰酶,用剩余的胰酶繼續(xù)消化,這對于貼壁松的細(xì)胞是可以的,但該方法并不適用于貼壁緊的細(xì)胞。胰酶量太少無法將貼壁緊的細(xì)胞消化徹底。胰酶的最適溫度是37℃,有一種常用策略是室溫消化,當(dāng)溫度低于37℃時胰酶活性低,室溫環(huán)境消化還可以放在顯微鏡下邊看邊消化,更容易把握消化進(jìn)度。但仍然需要注意這適用于貼壁較松且比較脆弱的細(xì)胞,對于貼壁緊的細(xì)胞室溫下是很難消化下來的,甚至可能因消化時間過長對細(xì)胞產(chǎn)生傷害。常見的胰酶濃度有0.125%,0.25%和0.5%。常規(guī)細(xì)胞系多用0.25%胰酶,而對胰酶敏感的較脆弱的細(xì)胞可使用0.125%胰酶消化。應(yīng)根據(jù)細(xì)胞的貼壁特性和胰酶耐受程度,使用不同濃度的胰酶。
解決方案:根據(jù)細(xì)胞貼壁特性選擇合適的胰酶使用量、濃度和消化溫度。
4.胰酶失活
胰酶開封久了活性會降低甚至徹底失活,所以小伙伴們可以根據(jù)需要將開封的胰酶分裝到離心管中,將暫時不用的部分放在-20℃冰箱冷凍,放在2-8℃冷藏的胰酶也要盡早使用完畢哦。
解決方案:若發(fā)現(xiàn)胰酶開封太久,建議使用新的胰酶進(jìn)行消化。
5.胰酶品牌差異
胰酶通常來自;蜇i的胰腺,不同廠家的提取加工工藝不同,所生產(chǎn)的胰酶消化時間差別較大。
解決方案:從不同廠家獲取胰酶試用裝,找到最適合自己細(xì)胞的胰酶品牌。
6.細(xì)胞密度過大或長時間不傳代
細(xì)胞密度過大,造成細(xì)胞擁擠或者堆疊時細(xì)胞將變得更難消化。另外,細(xì)胞長時間培養(yǎng)不傳代也有可能使細(xì)胞貼壁變緊。
解決方案:若出現(xiàn)上述情況,可增加胰酶的用量,并適當(dāng)延長消化時間,直到細(xì)胞能夠脫落。
7. 增加胰酶的用量,延長消化時間,用常規(guī)方法細(xì)胞仍消化不下來,如何處理?
解決方案:若出現(xiàn)上述情況,先判斷細(xì)胞消化前的狀態(tài)是否正常,若細(xì)胞形態(tài)異常,出現(xiàn)老化或分化現(xiàn)象,貼壁就會異常牢固,用常規(guī)方法消化不下來?蓢L試用刮刀將細(xì)胞刮下來,離心傳代后觀察細(xì)胞狀態(tài),若細(xì)胞形態(tài)狀態(tài)仍異常,建議丟棄,重新復(fù)蘇其他批次。