逆轉(zhuǎn)錄實驗原理、流程及常見問題

逆轉(zhuǎn)錄（reverse transcription）是以RNA為模板合成DNA的過程，合成的DNA稱為cDNA。逆轉(zhuǎn)錄過程遺傳信息的流動方向為RNA到DNA，與轉(zhuǎn)錄過程DNA到RNA的方向相反，故稱為逆轉(zhuǎn)錄。

實驗原理：

酶促催化使RNA反轉(zhuǎn)錄為cDNA第一鏈。一條寡聚脫氧核苷酸引物先與RNA雜交，然后由RNA依賴的DNA聚合酶催化合成相應(yīng)互補的cDNA拷貝，后者能進一步用于PCR擴增。依據(jù)實驗的不同目的，針對cDNA第一鏈合成的引物可根據(jù)特殊的靶基因設(shè)計，或可用隨機引物與所有mRNA雜交。

實驗流程：

1. 實驗前準(zhǔn)備
RNA樣品、逆轉(zhuǎn)錄試劑盒（以諾唯贊R312為例）

2. 實驗步驟
① 試劑化凍后，用手輕彈混勻后短暫離心。
② 基因組DNA（gDNA）去除：根據(jù)RNA樣品的濃度按10pg~1μg計算用量，在RNase-free離心管中依次加入RNase-free ddH2O，5×gDNA Wiper Mix 2μL，RNA樣品，總體系為10μL。用移液器吹打混勻后短暫離心。放入PCR儀，設(shè)置反應(yīng)條件為42℃ 2min。
③ 第一鏈cDNA合成：根據(jù)上一步反應(yīng)管的數(shù)量按以下體系在RNase-free離心管中配制預(yù)混液：RNase-free ddH2O 5μL，逆轉(zhuǎn)錄引物（2μM）1μL，10×RT Mix 2μL，HiScript II Enzyme Mix 2μL，用移液器吹打混勻后短暫離心。在上一步得到的反應(yīng)管中每管加入10μL，用移液器吹打混勻后短暫離心。放入PCR儀，設(shè)置反應(yīng)條件為25℃ 5min，50℃ 15min，85℃ 5min。所得cDNA產(chǎn)物可立即用于qPCR反應(yīng)或-20℃保存。

注意事項：
1. 防止RNase污染：保持實驗區(qū)域潔凈；操作時需穿戴干凈的手套、口罩；實驗所用的離心管、槍頭等耗材均需保證RNase-free。
2. 反應(yīng)液的配制要在冰上操作完成，防止溫度過高造成RNA降解。
3. cDNA保存時避免反復(fù)凍融。

常見問題：

1. 逆轉(zhuǎn)錄后的產(chǎn)物可以測濃度嗎？
不建議測濃度，一般評估RNA模板的質(zhì)量，需要從濃度、純度及完整性三方面進行考量，但逆轉(zhuǎn)錄后的產(chǎn)物是一個混合體系，有cDNA、未完全逆轉(zhuǎn)錄的RNA、dNTP、殘余的引物以及各種蛋白和鹽離子等成分，會干擾cDNA的吸光度，因此不建議用逆轉(zhuǎn)錄后的cDNA來檢測濃度與純度。

2. 如何檢測RNA逆轉(zhuǎn)錄成功與否？
1) 內(nèi)參法：理論上，逆轉(zhuǎn)錄的cDNA是長度不同的DNA片段，所以電泳條帶應(yīng)該均勻分布在泳道上，如果RNA豐度低，電泳檢測也可能無產(chǎn)物，這種情況通過PCR擴增內(nèi)參基因，如果有擴增產(chǎn)物，cDNA的質(zhì)量基本上可以保證(少數(shù)情況下：如目的基因片段過長，可能會有例外)。
2) 已知基因擴增法：如果有已知以此模板擴出來的基因，可以用此基因的引物驗證。能擴增出內(nèi)參，不一定就說明cDNA沒有問題，因為內(nèi)參在cDNA中豐度高，容易擴增。如果cDNA因為各種原因?qū)е虏糠纸到�，則會大大影響低豐度的目的基因的PCR結(jié)果，而內(nèi)參因為是高豐度基因，擴增很可能不受影響。
3. 逆轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物中存在gDNA對后續(xù)qPCR實驗有何影響？
當(dāng)cDNA產(chǎn)物中混有g(shù)DNA時，cDNA和gDNA在qPCR反應(yīng)時會被同時擴增，無法區(qū)分熒光信號是來自于cDNA還是gDNA，因此定量結(jié)果可能會存在偏差。特別是低表達量的基因，本身的擴增信號低，Ct值大，更加容易受到gDNA污染的影響。在逆轉(zhuǎn)錄的時候，加一步gDNA去除的步驟，能夠有效降低gDNA污染的影響，增加實驗的可信度。