免疫熒光(IF)實驗操作過程
瀏覽次數:765 發(fā)布日期:2024-7-2
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免疫熒光技術(Immunofluorescence technique )又稱熒光抗體技術,免疫熒光技術是根據抗原抗體反應的原理,先將已知的抗原或抗體標記上熒光素,制成熒光抗體,再用這種熒光抗體(或抗原)作為探針檢測組織或細胞內的相應抗原(或抗體)。在組織或細胞內形成的抗原抗體復合物上含有標記的熒光素,利用熒光顯微鏡觀察標本,熒光素受外來激發(fā)光的照射而發(fā)生明亮的熒光(黃綠色或橘紅色),可以看見熒光所在的組織細胞,從而確定抗原或抗體的性質、定位,以及利用定量技術測定含量。
免疫熒光實驗操作步驟:
一、固定和透化
1. 在培養(yǎng)板中將已爬好細胞的蓋玻片用1 × PBS浸洗3次,每次3 min。
2. 用4%的多聚甲醛固定爬片15 min,1 × PBS浸洗玻片3次,每次3 min。
3. 0.5% Triton X-100(1× PBS配制 )室溫通透細胞15 min(細胞膜上表達的抗原省略此步驟), 1 × PBS浸洗玻片3次,每次3min。
二、封閉
4. 吸水紙吸干1 ×PBS,在玻片上滴加5%的正常血清(與二抗種屬來源一致或相似),室溫封閉1 h。
三、抗體孵育
5. 吸水紙吸掉封閉液,不洗,每張玻片滴加足夠量的稀釋好的一抗并放入濕盒,4 ℃孵育過夜。
6. 加熒光二抗: PBST 浸洗爬片3次,每次3 min,吸水紙吸干爬片上多余液體后滴加稀釋好的熒光二抗,濕盒中37℃孵育1 h,PBST浸洗爬片3次,每次3 min。
注意:從加熒光二抗起,后面所有操作步驟都盡量在較暗處進行。
四、固定拍照
7. 復染核:滴加DAPI避光孵育5 min,對標本進行染核,PBST 5 min×4次洗去多余的DAPI。
8. 用吸水紙吸干爬片上的液體,用含抗熒光淬滅劑的封片液封片,在熒光顯微鏡下觀察采集圖像。